ANCA-ассоциированный быстропрогрессирующий гломерулонефрит


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/nephrology.2018.3.72-87

Н.Ф. Фролова

ГБУЗ «Городская клиническая больница № 52» ДЗМ; Москва, Россия
АНЦА-ассоциированные гломерулонефриты (ГН) – группа заболеваний с поражением клубочков почки, в основе которых лежит некротизирующий васкулит, связанный с образованием антител к цитоплазме нейтрофилов. Клинической особенностью АНЦА-ГН является склонность к быстропрогрессирующему течению ГН со снижением скорости клубочковой фильтрации более чем на 50% в течение нескольких недель или месяцев. В статье представлен обзор литературы, посвященной эпидемиологии, классификации, этиологии и патофизиологии, клинике и лечению ANCA-ассоциированного быстропрогрессирующего ГН.
Ключевые слова: Быстропрогрессирующий гломерулонефрит, васкулит

1.1. Эпидемиология ANCA-ассоциированного быстропрогрессирующего гломерулонефрита

ANCA-ассоциированные васкулиты (ANCA-АВ) объединяют группу системных заболеваний, характеризующихся некротизирующим воспалением преимущественно мелких сосудов (капилляров, венул, артериол и мелких артерий), наличием циркулирующих антинейтрофильных цитоплазматических антител (ANCA) со специфичностью к миелопероксидазе (MPO-ANCA) или протеиназе-3 (PR3-ANCA) и отсутствием (или небольшим количеством) иммунных депозитов и потребления комплемента (малоиммунные васкулиты) [62, 135, 136].

ANCA-АВ включают следующие клинические варианты: микроскопический полиангиит (МПА), гранулематоз с полиангиитом (ГПА) и эозинофильный гранулематоз с полиангиитом (ЭГПА), которые характеризуются полиморфной клинической картиной, обусловленной ишемическими повреждениями органов и тканей, кровоснабжаемых соответствующими сосудами, и представляют собой потенциально фатальное заболевание вследствие полиорганного повреждения жизненно важных органов [92].

Одним из наиболее клинически значимых проявлений ANCA-АВ и, возможно, самым серьезным, определяющим тяжесть течения заболевания и прогноз, считается быстропрогрессирующий пауци-иммунный (малоиммунный) гломерулонефрит [98, 148].

Поражение почек при ANCA-васкулите характеризуется развитием ГН с быстрым и прогрессирующим нарушением функции почек. Главным его морфологическим проявлением является пролиферация париетального эпителия капсулы Шумлянского–Боумена с интенсивным формированием экстракапиллярных клеточных или фиброзно-клеточных полулуний и, таким образом, клинический термин «быстропрогрессирующий гломерулонефрит» (БПГН) часто взаимозаменяемо используется с патологоморфологическим термином «полулунный гломерулонефрит» [106, 107].

Изучение на популяционном уровне эпидемиологии редких заболеваний, таких как ANCA-васкулит, распространенности и исходов ANCA-ассоциированного БПГН (ANCA-БПГН) – достаточно сложная задача. Источником данных об эпидемиологии ANCA-БПГН служат преимущественно регистры пациентов с острым почечным повреждением (ОПП) или с хронической болезнью почек (ХБП), которым была выполнена биопсия почки, что позволяет составить представление о распространенности его отдельных морфологических форм [192].

Среди всех случаев БПГН до 80% приходится на ANCA-БПГН, частота которого колеблется от 4 до 300 случаев/млн/год и в среднем, по оценкам многих исследователей, составляет 15–23 случаев в год на миллион населения [86, 107, 150, 182].

Вовлечение почек в патологический процесс отмечают у 70–80% пациентов с ГПА, у 80–90% с МПА и в 24–45% случаев ЭГПА, что значительно отягощает течение заболевания, ухудшает как общую выживаемость больных, так и почечную выживаемость [30, 42, 57, 140, 146, 148, 164, 166, 176].

Представляет интерес распространенность ANCA-ассоциированного васкулита в зависимости от географического региона и этнической принадлежности пациентов. Частота PR3-ANCA и МРО-ANCA васкулитов варьируется во всем мире, возможно, в результате сочетания генетических пулов и определенных факторов окружающей среды. Так, установлен факт большей частоты ГПА в холодном климате, а МПА – в теплом. Распространенность ГПА наиболее высока в странах Северной Европы, в то время как частота МПА и вероятность поражения почек возрастают по мере продвижения в южные широты и страны Азии. В странах Северной Европы наиболее высока распространенность ГПА, в то время как частота МПА и вероятность поражения почек возрастают по мере продвижения в южные широты и страны Азии [42, 43].

Предполагаемые показатели частоты ежегодных новых случаев ГПА или МПА близки и варьируются от 2 до 12 случаев/млн/год при общей распространенности от 23 до 160 случаев/млн/год [148].

Наибольшая заболеваемость ANCA-АВ отмечена в Швеции: 300 на 1 млн жителей, при этом антитела к МРО выявляют только у 35% больных, в то время как в Японии, наоборот, выше распространенность МПА (84% пациентов MPO-ANCA позитивны) и не было зарегистрировано ни одного случая ГПА [49, 71]. Проведенные в последние годы исследования показали, что заболеваемость МПА в Японии аналогична заболеваемости в Соединенном Королевстве [71]. В Южной Европе и Азии чаще регистрируются ANCA со специфичностью к МРО, чем к PR3, за исключением Новой Зеландии и Австралии [74, 149, 164, 163, 230]. Было сообщено, что заболеваемость ANCA-АВ со специфичностью к PR3 в Великобритании составляет 11,3 случая/млн/год и 3,0 на млн/год в Испании, в то время как заболеваемость со специфичностью к МРО составила 5,9 и 7,9 случая/млн /год соответственно [77, 228]. Предполагаемые ежегодные случаи ГПА или МПА близки и варьируются от 2 до 12 случаев/млн/год с распространенностью от 23 до 160 случаев/млн/год [148].

ЭГПА встречается гораздо реже, чем ГПА или MПA, с частотой 1–4 случая/млн/год и распространенностью около 10–20 случаев/млн/год [142, 167].

ANCA-АВ чаще ассоциируется с МРО-ANCA, чем с PR3-ANCA, в Южной Европе и Азии, за исключением Новой Зеландии и Австралии [74, 132, 149, 162, 163, 164].

Проведенные в последние годы исследования показали, что заболеваемость МПА в Японии аналогична таковой в Соединенном Королевстве [71].

Недавнее британское исследование продемонстрировало наличие пиков заболеваемости ГПА каждые 8–10 лет по сравнению с фоновой заболеваемостью (17,4 и 4,53 случая/млн/год соответственно) в отсутствие такой периодичности при MПA [103, 229].

Значительный научный интерес представляют результаты когортных исследований в Европе, США, Китае, Индии, в которых изучалась распространенность, патофизиология, патоморфология и клинические исходы серонегативных случаев пауци-иммунного ANCA-БПГН [4, 44, 46, 54, 89, 191–193, 221, 234]. По данным популяционного 10-летнего ретроспективного исследования, проведенного в Великобритании Hedger N. et al., среднегодовой показатель заболеваемости ANCA-БПГН составил 3,9 на 1 млн населения (диапазон – 3,3–4,7). При этом авторы установили, что 27% (35 из 128) из них были ANCA-негативными [91]. Исследование, проведенное Hung Р. et al. на Тайване, установило, что 38% больных (15 из 40) с пауци-иммунным БПГН были ANCA-негативными [103]. Однако следует отметить, что отсутствие единых определений «полулунного» и «пауци-иммунного» ГН (т.е. различные критерии, используемые для оценки наличия полулуний и интенсивности окрашивания иммуноглобулина в образцах почечных биоптатов) ограничивают сопоставимость результатов в опубликованных исследованиях.

ANCA-ассоциированный БПГН встречается в любом возрасте, включая детский и старческий, но типичный возраст начала заболевания приходится на 5–6-й десятилетия жизни, причем в ряде исследований показано, что мужчины болеют несколько чаще, чем женщины [118, 156, 227]. Было установлено, что соотношение мужчин и женщин выше при PR3-ANCA (1,3–1,9), чем при MPO-ANCA (0,3–0,8) [73, 76]. В когортном исследовании пациентов с ANCA-ГН, проведенном M. Hilhorst et al., соотношение мужчин и женщин составило 3:1 для пациентов с PR3-ANCA и 1,9:1 с МРО-ANCA [96].

1.2. Классификация и номенклатура ANCA-ассоциированного быстропрогрессирующего гломерулонефрита

Впервые термин БПГН был использован A. Ellis в 1942 г. для описания необычно молниеносного течения постстрептококкового гломерулонефрита (ГН) со стремительной потерей функции почек и формированием эпителиальных полулуний при морфологическом исследовании почечного биоптата [48].

Несколько лет спустя в экспериментальном исследовании при полулунном ГН были обнаружены антитела к гломерулярной базальной мембране (анти-ГБМ), что позволило объяснить роль анти-ГБМ антител в развитии БПГН, ассоциированного с синдромом Гудпасчера. В середине 1970-х гг. описана группа пациентов, которая соответствовала клиническим критериям БПГН, но при этом антитела к гломерулярной базальной мембране (ГБМ) не были обнаружены. Многие из этих случаев были связаны с симптомами системного сосудистого воспаления (системного васкулита), но в некоторых наблюдениях регистрировали изолированное заболевание почек. Особенностью данных случаев было отсутствие депонирования иммунных комплексов при иммунофлюоресцентном (ИФ) исследовании почечных биоптатов, что и обусловило появление термина «пауци-иммунный (малоиммунный) БПГН» [181].

Циркулирующие ANCA впервые обнаружили в 1982 г. D.J. Davies и et al. у 8 пациентов с некротизирующим полулунным пауци-иммунным ГН на фоне неклассифицированного васкулита. На основании результатов серологических исследований, которые свидетельствовали о перенесенной вирусной инфекции Ross River у 7 из 8 пациентов, высказано предположение о связи БПГН с данным вирусом [46].

Впоследствии в ряде исследований выявили ANCA более чем у 80% пациентов с некротизирующим пауци-иммунным ГН и, таким образом, в клиническую практику вошло понятие «ANCA-ассоциированный системный васкулит» [85, 241]. В 1990 г. Американская коллегия ревматологов (ACR) на основе анализа клинических характеристик пациентов предложила критерии классификации семи первичных форм диагностированного системного васкулита: гигантноклеточного артериита, артериита Такаясу, узелкового полиартериита (УП), пурпуры Шенлейна–Геноха, синдрома Чарга–Стросс (СЧС), гранулематоза Вегенера (ГВ) и гиперчувствительного васкулита. Однако следует отметить, что критерии ACR были разработаны с целью создания не номенклатуры и диагностических критериев системных васкулитов, а категорий классификационных, необходимых для проведения эпидемиологических и научных исследований, но не для их использования в клинической практике. Применение критериев ACR приводило к частым пересечениям между синдромами СЧС, ГВ и УП. Кроме того, критерии были разработаны до широкого распространения ANCA-тестирования, вследствие чего последние не могли быть учтены при дифференциальной диагностике между ГВ, СЧС, а также УП (отсутствие при последнем ANCA) и не охватывали все клинические варианты ANCA-АВ [175].

В 1994 г. на согласительной конференции в Чапел-Хилл (Chapel Hill Consensus Conference; США, Северная Каролина), посвященной номенклатуре системных васкулитов, были приняты определения, предложенные J. Lie, которые классифицировали васкулиты в соответствии с размером сосудов, вовлеченных в патологический процесс, и выделили васкулиты с преимущественным поражением сосудов крупного, среднего или мелкого калибров [136]. Также было предложено определение МПА, для которого характерно преимущественное поражение мелких сосудов (капилляров, венул или артериол). Одновременно было отмечено, что, напротив, при классическом УП в патологический процесс вовлекаются артерии среднего или малого калибра без развития ГН [111].

В последующем критерии системных васкулитов неоднократно пересматривались, как и названия отдельных нозологических форм, главным образом в связи с получением новой информации об их патогенезе. Так, в 2009 г. Европейская лига ревматологов (European Legue Against Rheumatism – EULAR), сохранив принцип градации васкулитов в зависимости от размеров пораженных сосудов, дала определение и опубликовала рекомендации по оценке, исследованию и мониторингу пациентов с системными васкулитами [29].

В связи с необходимостью создания новых критериев, характеризующихся высокой специфичностью и чувствительностью, способных с высокой достоверностью диагностировать системный васкулит, пересмотрена и принята группой ревматологов и патологов на международной согласительной конференции в Чапел-Хилл в 2012 г. новая классификация. В предложенной классификации по сравнению с предыдущей версией 1994 г. сохранился анатомический принцип подразделения системных васкулитов, были учтены особенности иммунных механизмов, включены дополнительные категории и уточнены определения нозологических форм.

В том же году на конференции Европейского общества по изучению васкулитов (EUVAS) была представлена обновленная классификация и номенклатура системных васкулитов, ранее утвержденная на международной согласительной конференции в Чапел-Хилл [3, 47, 110]. В соответствии с рекомендациями экспертов предложено заменить эпонимы с описательной номенклатурой синдромов (название заболевания по имени автора) на описание болезни и включить в ANCA-АВ следующие категории:

Микроскопический полиангиит (MПА): пауци-иммунный негранулематозный некротизирующий васкулит с вовлечением мелких сосудов, часто сопровождающийся некротизирующим ГН, легочным капилляритом и иногда некротизирующим артериитом с поражением артерий малого и среднего калибра;

Гранулематоз с полиангиитом (ГПА; ранее гранулематоз Вегенера): васкулит с локализацией в сосудах малого калибра, при котором наблюдаются признаки не только васкулита, но и некротизирующего гранулематозного воспаления респираторного тракта, некротизирующего васкулита в артериях малого и среднего калибра и частое развитие некротизирующего ГН;

Эозинофильный гранулематоз с полиангиитом (ЭГПА; ранее синдром Чардж–Стросса): некротизирующий васкулит с поражением мелких и средних сосудов, для которого характерны внесосудистые гранулемы, эозинофилия и инфильтрация ткани эозинофилами в ассоциации с астмой, аллергическим ринитом, полипозом носа или их комбинацией и развитием БПГН [110, 118].

В последние годы предлагают выделять четвертый, особый, вариант пауци-иммунного ГН – почечно-ограниченный васкулит, при котором отсутствуют системные проявления болезни [190]. Однако с выделением данного варианта ANCA-АВ согласны не все исследователи, которые расценивают почечно-ограниченный васкулит как часть спектра МПА [41, 94, 101].

В настоящее время под эгидой ACR и EULAR разрабатываются диагностические критерии первичных системных васкулитов. В международном наблюдательном исследовании DCVAS (Diagnostic Classification Criteria Vasculitis) принимают участие более 100 медицинских центров из 31 страны Азии, Австралии, Европы, Северной и Южной Америки. В исследование включены более 2000 пациентов с системным васкулитом и более 1500 пациентов с другими аутоиммунными заболеваниями [43].

1.3. Этиология и патофизиология ANCA-ассоциированного васкулита

Как и в большинстве аутоиммунных заболеваний, этиология и патогенез АNCA-АВ несомненно являются многофакторной патологией с участием генетических нарушений, факторов врожденной и адаптивной иммунной системы, неблагоприятных воздействий окружающей среды, интенсивности и продолжительности повреждения [46, 94, 143].

Aнтинейтрофильные цитоплазматические антитела представляют собой гетерогенную популяцию аутоантител и являются представителями семейства антител, реагирующих с различными компонентами первичных гранул цитоплазмы нейтрофилов и лизосом моноцитов. Идентифицированы два различных образца иммунофлюоресцентного свечения антител – цитоплазматическое, направленное против протеиназы-3 (PR3-ANCA или с-ANCA), и перинуклеарное, направленное против миелопероксидазы (MPO-ANCA или р-ANCA) [55, 64, 93, 97, 102, 101, 111].

Связь между ANCA и патогенезом ANCA-ассоциированного заболевания остается неясной. Однако сам факт наличия ANCA-аутоантител отражает их аутоиммунную природу, несмотря на то что происхождение ANCA до настоящего времени неизвестно. Тем не менее в настоящее время существуют доказательства того, что ANCA непосредственно участвуют в патогенезе пауци-иммунного васкулита и с вовлечением мелких сосудов развитием БПГН[111].

Исследования in vitro свидетельствуют о том, что эти аутоантитела могут активировать нормальные человеческие полиморфноядерные лейкоциты. Предполагают, что ANCA вызывают преждевременную дегрануляцию и активацию нейтрофилов, что приводит к высвобождению литических ферментов и токсичных активных форм кислорода в месте повреждения [60]. Далее показано, что активация нейтрофилов ANCA в сосудистой стенке приводит к повреждению эндотелиальных клеток [185] и ANCA способствуют стабильной адгезии и последующей миграции нейтрофилов в эндотелий [173].

В большинстве (90%) случаев активного васкулита выявляют ANCA, при этом пациенты с ГПА имеют более тесную ассоциацию с PR3-ANCA (70–80%), чем с MPO-ANCA (10%). С другой стороны, большинство пациентов с МПА (60%) MPO-ANCA позитивны, но в 30% случаев они так же как и PR3-ANCA позитивны [158]. При почечно-ограниченном ANCA-АВ до 80% пациентов имеют МРО-ANCA, в то время как остальные – PR3-ANCA [190].

Во многих случаях клинические рецидивы заболевания совпадают с увеличением уровней циркулирующих аутоантител.

Несмотря на относительное преобладание антигенной специфичности при разных клинических вариантах ANCA-АВ, ни один подтип ANCA не позволяет дифференцировать фенотипы некротизирующего васкулита мелких сосудов. Следует отметить, что в европейской популяции до 10% пациентов с тремя наиболее распространенными фенотипами васкулита ANCA-негативны [4, 44].

Пауци-иммунный ГН понимается как сложный спектр заболеваний со значительным пересечением в плане клинического фенотипа и исходов. Кроме того, установлено вовлечение в его патогенез генетических, эпигенетических, экологических и инфекционных факторов, но убедительная модель патогенеза болезни все еще пока остается неуловимой.

Показано, что повышенный риск ANCA-АВ может быть связан с хроническим профессиональным воздействием экологических токсинов [237].

Данные наблюдения основаны на описании серии случаев, в которых сообщалось об очевидной ассоциации между экспозицией загрязняющих веществ в воздухе (например, двуокиси кремния) и развитием ANCA-АВ, главным образом МПА. Предполагают, что макрофаги фагоцитируют диоксид кремния, например, в легких, продуцируют провоспалительные цитокины, которые атакуют нейтрофилы и одновременно способствуют формированию антител против компонентов нейтрофилов. Частицы диоксида кремния транспортируются в региональные лимфатические узлы, что приводит к хронической активации Т-клеток и вызывает аутоиммунные реакции у чувствительных пациентов [30, 134, 177, 181, 239].

Индуцировать ANCA-АВ могут лекарственные препараты, такие как гидралазин, левамизол, миноциклин, D-пеницилламин, цефотаксим, изониазид, ингибиторы фактора некроза опухоли альфа (TNF-α), аллопуринол, психоактивные средства (в частности, кокаин) и др. Для лекарственно-ассоциированного ANCA васкулита характерно наличие антител к МРО, эластазе и лактоферрину [51, 126, 168, 176, 195, 207, 211, 236].

У пациентов с гипертиреозом при применении пропилтиоурацила – ингибитора MPO может развиться синдром, подобный MPO-ANCA васкулиту [237].

В экспериментальных исследованиях при MPO-ANCA-васкулите с развитием БПГН, вызванным пропилтиоурацилом, были установлены отклонения в структуре и деградации внеклеточных нитей нейтрофилов (NETs). Этот процесс включает высвобождение волокон хроматина и внутрицитоплазматических белков, в т.ч. PR3, MPO, лактоферрин и др. [159]. Полагают, что NETs могут стимулировать образование аутоантител, а также служить в качестве каркаса для тромбоза, тем самым обеспечивая связь между инфекцией, аутоиммунной реакцией и тромбозом.

Все более признанными потенциальными причинами аутоиммунных заболеваний признаются инфекции [130, 203, 238]. К числу инфекционных агентов с установленными прямыми и/или опосредованными повреждающими эффектами, связанными с развитием васкулита, относят Staphylococcus aureus и грамотрицательные бактерии, а также многочисленные вирусы (Ross River, Cytomegalovirus, Epstein-Barr, Parvovirus, Human Immunodeficiency virus и др.) [54, 171, 248]. В частности, установлено, что 67% пациентов с ГПА служат хроническими носителями золотистого стафилококка, что потенциально может служить экзогенным стимулом продукции В-лимфоцитами PR3-ANCА и объяснением наблюдаемых сезонных колебаний частоты ГПА с увеличением от 1,6 до 31-кратного риска рецидивов ANCА-АВ у пациентов со стафилококковой инфекцией [62, 171, 203, 229].

Кроме того, по данным рандомизированного исследования, установлено, что триметоприм-сульфаметоксазол (TMP-SXT) является эффективным средством стимулирования ремиссии ANCА-АВ. Однако остается неясным, связан ли данный эффект с антимикробным действием или некоторыми другими свойствами TMP-SXT [200].

Инфекционный триггер (адгезия бактериального белка FimH) активирует нейтрофилы и эндотелиоциты, увеличивает количество молекул адгезии эндотелиальных клеток, а также количество циркулирующих эффекторных Т-клеток. Активированные нейтрофилы характеризуются повышенной экспрессией поверхностных антигенов ANCA и молекул адгезии. Так, патогенность ANCA, как уже было указано выше, подтверждается в исследованиях in vitro, в которых показано, что в присутствии ANCA возрастает адгезия нейтрофилов к эндотелиальной стенке, трансмиграция их через эндотелий и дегрануляция с высвобождением цитокинов, хемокинов и активацией каскадных воспалительных систем [63]. B.H. Ewert et al. [58] также показали, что при инкубации нейтрофилами и ANCA повреждаются эндотелиальные клетки, и отметили, что ANCA способны in vitro вызывать нейтрофил-обусловленное воспаление и эндотелиальное повреждение.

В настоящее время уточнены патогенетические механизмы эндотелиального повреждения. Так, было показано, что интерлейкин-1 и фактор некроза опухоли увеличивают экспрессию Р и Е селектина на поверхности нейтрофилов, а ANCA-экспрессия В2-интегрина ведет к возрастанию адгезии нейтрофилов к эндотелию и трансмиграции через него с высвобождением цитокинов и повреждением эндотелия [47].

В последнее время изучается роль в патогенезе ANCA-АВ другого типа аутоантител, направленных против лизосомального мембранного белка-2 (анти-LAMP-2), наличие которого установлено почти у всех пациентов с пауци-иммунным некротизирующим ГН. При этом отмечают более высокую частоту обнаружения анти-LAMP-2 по сравнению с ANCA. R. Kain et al. впервые обнаружили новые циркулирующие антитела LAMP-2 у анти-PR3 и анти-MPO позитивных пациентов с ANCA-АВ. У пациентов с ANCA-АВ без вовлечения почек в патологический процесс или при ремиссии заболевания анти-LAMP-2 отсутствовали.

Авторы высказали предположение, будто анти-LAMP-2 представляют собой новый подтип ANCA и вызывают апоптоз эндотелиальных клеток микрососудистого русла и малоиммунный некротизирующий ГН. В качестве механизма индукции патогенных ANCA была предложена гипотеза молекулярной мимикрии между антителами LAMP-2 и белком бактериальной адгезии (Fim-H), который в свою очередь указывает на роль в патогенезе заболевания бактериальной инфекции [119, 121, 217].

Тем не менее распространенность и патогенность этих антител у больных ANCA-АВ все еще остаются спорными. Некоторые авторы отмечают, что анти-LAMP-2-антитела широко распространены в европейской когорте [120], в то время как в когорте пациентов США гораздо меньше частота выявления анти-LAMP-2-аутоантител. A.J. Roth et al. [182] поставили под сомнение распространенность анти-LAMP-2-антител и их отношение к ANCA-АВ,- и пришли к выводу, согласно которому эти антитела лишь изредка встречаются в популяции и не специфичны для ANCA-АВ, поскольку с одинаковой частотой обнаруживаются как при наличии в сыворотке ANCA, так и в контрольной группе с грамотрицательной инфекцией мочевыводящих путей. Кроме того, авторы не выявили корреляции между анти-LAMP-2 антителами и активностью болезни.

Позже R. Kain et al. [120] подтвердили свои оригинальные результаты и показали, что анти-LAMP-2-аутоантитела имеют различную кинетику к PR3 и MPO и их обнаружение в стадии ремиссии заболевания менее вероятно. Так, по данным R. Kain et al. [120], самые высокие титры анти-LAMP-2 выявлялись у пациентов с впервые диагностированным и нелеченым ANCA-АВ по сравнению с таковым у пациентов, получавших иммуносупрессивную терапию, в то время как A.J. Roth et al. [121] включали в анализ только ограниченное число вновь выявленных и пролеченных пациентов.

Последние сообщения свидетельствуют о том, что противоречивые результаты о клинической значимости LAMP-2-антител, возможно, связаны с различиями в критериях отбора пациентов и используемых тестах обнаружения LAMP-2-антител, которые должны быть стандартизированы [120].

В недавно опубликованном исследовании при ANCA-негативном БПГН показано, что анти-LAMP-2-антитела селективно связываются с нативной клубочковой LAMP-2 вместо нейтрофильной LAMP-2, на основании чего было высказано предположение об определенной роли анти-LAMP-2-антител в патогенезе почечного повреждения [169].

В другом исследовании пациентов с ANCA-негативным БПГН показано, что анти-LAMP-2-антитела селективно связываются с нативной клубочковой LAMP-2 вместо нейтрофильной LAMP-2, на основании чего было высказано предположение об определенной роли анти-LAMP-2-антител в патогенезе заболевания [169, 184]. При связывании ANCA с PR3 или MРO, адгезированными на эндотелиальных клетках, локально формируются транзиторные иммунные комплексы, что сопровождается активацией комплемента и способствует еще большей дегрануляции нейтрофилов. В недавних исследованиях показано, что иммуноглобулин, изолированный от больных ANCA-АВ, как с PR3, так и с MPO, может вызывать активацию комплемента в нейтрофилах, а вытяжка из активированных нейтрофилов способна активировать комплемент в нормальной сыворотке с образованием С-5а и развитием нейтрофил-обусловленного воспаления, что приводит к повышенной гибели клеток [78, 122, 141].

В экспериментальной модели показано, что у С5- или фактор-В-нокаутированных мышей ГН не развивается по сравнению с С4-нокаутированными мышами [186]. Кроме того, применение анти-MPO-антител с последующим лечением ингибитором C5 эффективно предотвращает болезнь [61]. Активация системы комплемента через альтернативный путь, как полагают, является одним из ключевых механизмов развития ANCA-опосредованной болезни [122].

Роль активации комплемента может объяснить и связанное с этим увеличение тромбоэмболических событий при ANCA-АВ [141]. У четверти пациентов с ГПА высокую частоту венозных тромбоэмболических осложнений и большую тяжесть почечных и системных поражений связывают с анти-плазминогеновыми антителами. Установлено, что антитела к комплементарной PR3 могут перекрестно реагировать с плазминогеном [32, 86].

Анти-плазминогеновые антитела в состоянии тормозить фибринолиз и увеличивать процент клубочков с фибриноидным некрозом, клеточными полулуниями и, соответсвенно, вызывать более тяжелое снижение почечной функции [217].

Другой вероятной версией повышения риска венозных тромбоэмболий при ANCA-АВ является развитие гиперкоагуляции (повышение эндогенного тромбинового потенциала) и эндотелиальной дисфункции/активациии (повышение уровня фактора VIII), которые обнаруживаются у пациентов с ANCA-АВ даже в стадии ремиссии [96].

Полагают, что Т-лимфоциты также играют роль в патогенезе ANCA-АВ. Популяция эффекторных клеток памяти возрастает, способствуя тканевому повреждению и прогрессированию болезни, поддерживая хроническое гранулематозное воспаление с образованием лимфоидоподобного очага, продуцирующего ANCA [243, 133].

Таким образом, на данный момент клиническое значение LAMP-2-аутоантител в отличие от PR3-ANCA и MPO-ANCA до сих пор не определено. Тем не менее патогенная роль МРО- и PR3-аутоантител в развитии ANCA-АВ также требует дополнительных исследований.

В последние годы интенсивно изучается роль генетических факторов в патогенезе ANCA-АВ. Этот интерес обусловлен тем фактом, что у ряда лиц, подвергающихся воздействию неблагоприятных факторов окружающей среды, не развивается васкулит, с другой стороны, регистрируется значительно большая распространенность ANCA-АВ в европеоидной популяции [140, 218].

В ряде исследований показано, что три основных подтипа ANCA-АВ связаны с особыми вариантами HLA: ГПА с HLA-DPB1, МПА с HLA-DQ и эозинофильный ГПА с HLA-DRB4 [145, 166, 232, 244].P.A. Lyons et al. [140] продемонстрировали, что к потере толерантности к PR3 и MPO предрасполагают такие генетические факторы как полиморфизм генов, кодирующих экспрессию PR3 на поверхности клеточной мембраны, и часто выявляемый дефект гена альфа-1 антитрипсина (ингибитора PR3) при ГПА. Следствием перечисленных изменений может быть повышенная продукция антител к PR3, ассоциация между высоким уровнем поверхностной экспресии PR3 и риском развития ANCA-АВ. У здоровых лиц MPO обычно не экспрессируется на клеточной мембране неактивных нейтрофилов, в то время как мембранная экспрессия PR3 индивидуальна и генетически детерминирована [140]. Пациенты с ГПА, как известно, имеют более высокий процент нейтрофилов с повышенной экспрессией PR3 на поверхности клеточной мембраны [240].

Следствием перечисленных изменений может быть повышенная продукция антител к PR3, ассоциация между высоким уровнем поверхностной экспресии PR3 и риском развития ANCA-АВ. У здоровых лиц MPO обычно не экспрессируется на клеточной мембране неактивных нейтрофилов, в то время как мембранная экспрессия PR3 индивидуальна и генетически детерминирована [140].

Среди пациентов с PR3-ANCA или MPO-ANCA отмечают клинические и гистологические различия. Так, почечно-ограниченный васкулит встречается в основном у больных MPO-ANCA, в то время как PR3-ANCA прочно ассоциируется с гранулематозным воспалением верхних и нижних дыхательных путей в сочетании с повреждением почек или его отсутствием. Кроме того, у пациентов с PR3-ANCA отмечают более широкое вовлечение в патологический процесс экстраренальных органов по сравнению с MPO-ANCA-позитивными пациентами [2, 15, 18, 69].

Тем не менее у некоторых пациентов с пауци-иммунным ГН с полулуниями в сыворотке крови отсутствуют ANCA. Кроме того, до 40% случаев локальной формы ГПА, ограниченной поражением респираторного тракта, также не сопровождаются гиперпродукцией ANCA [66, 99, 189], что не может быть связано только с объективными проблемами выявления ANCA в сыворотке крови [52].

Механизмы повреждения почек при ANCA-негативном пауци-иммунном БПГН, который может сопровождаться экстраренальными проявлениями, не расшифрован. Однако получены свидетельства ключевой роли активации нейтрофилов в повреждении почек, что сближает эту патологию почек с ANCA-позитивным васкулитом [44]. Так, при гистологическом исследовании почечного биоптата у больных с пауци-иммунным ГН типично присутствие нейтрофильных инфильтратов [54], а продукты дегрануляции нейтрофилов обнаруживают в сыворотке крови у ANCA-негативных пациентов даже в более высокой концентрации, чем в ANCA-позитивных случаях [224]. Эти факты дополняются клиническими данными, свидетельствующими об ассоциации ANCA-негативности с увеличением тяжести поражения гломерул, тубулоинтерстициального фиброза и ухудшением почечного прогноза, что следует принимать во внимание при планировании индукционной терапии пауци-иммунного БПГН [44, 54, 103].

Несмотря на то что патогенез ANCA-негативной болезни остается неизвестным, некоторые из возможных объяснений данного явления заключаются в том, что ANCA-негативные пациенты могут иметь аутоантитела, способные к активации нейтрофилов, как и их ANCA-положительные аналоги, но в настоящее время существующие методы исследования не способны их обнаруживать [100].

Недавние исследования выявили наличие и других антител к различным аутоантигенам сосудистой стенки при пауци-иммунном ГН. В частности, исследования у пациентов с MPO-ANCA-васкулитом установлено наличие в сыворотке крови и анти-moesin аутоантител, которые, как полагают, участвуют в секреции воспалительных цитокинов и хемокинов, а также в патогенезе ANCA-АВ [72, 209].

Результаты клинических и базовых фундаментальных исследований дают основание считать, что каждый из выделенных клинических вариантов ANCA-АВ имеет различные патогенетические механизмы и генетические ассоциации [50, 124, 167].

Патогенетические механизмы развития ANCA-АВ следуют общим принципам развития аутоиммунных воспалительных заболеваний, при которых выделяют начало заболевания с генерацией аберрантных патогенных аутоиммунных реакций; активную фазу повреждения, опосредованную эффекторными лейкоцитами, которыми при ANCA-AB являются преимущественно нейтрофилы, и фазу ответа на повреждение, которое включает преимущественно моноциты, макрофаги и Т-лимфоциты [41, 63, 113, 124].

В заключение этого раздела следует обратить внимание, что, как уже отмечено выше, в основе всех нозологических форм ANCA-АВ лежит системный некротизирующий васкулит преимущественно мелких сосудов, патогенетически связанный с ANCA. Несмотря на то что в настоящее время отсутствуют общепризнанные диагностические критерии, а также определения различных синдромов ANCA-АВ [161], диагноз ставится на основании клинических проявлений, обнаружения ANCA-антител и исключения вторичных причин. ANCA-АВ не является единым заболеванием, а представляет собой группу нозологий с мультисистемными проявлениями расстройств, которые имеют некоторые общие черты. Таким образом, клинические признаки ANCA-АВ могут изменяться, поскольку они зависят от стадии заболевания, вовлечения конкретных органов и систем, степени их повреждения, активности заболевания, тяжести и хронизации процесса [118, 180, 187].

1.4. Морфологическая классификация ANCA-ассоциированного быстропрогрессирующего гломерулонефрита

Несмотря на то что быстропрогрессирующая почечная недостаточность у пациентов с ANCA-АВ бесспорно предполагает БПГН, морфологическое исследование почечного биоптата служит «золотым» стандартом для установления диагноза. Дебаты относительно необходимости морфологического исследования почечного биоптата при типичной клинической картине серопозитивного ANCA-АВ склоняют к мнению о предпочтениях выполнения данного исследования с целью не только уточнения или подтверждения клинического диагноза, но и для оценки прогноза заболевания [107].

В настоящее время в зависимости от различий в типе свечения иммунореактантов в почечном биоптате и наличия повреждающих факторов в сыворотке (антител к ГБМ, иммунных комплексов, ANCA) выделяют пять иммунопатологических типов БПГН: антительный анти-ГБМ-нефрит; иммунокомплексный; малоиммунный; сочетанный (антительный и пауци-иммунный) и идиопатический [93].

ANCA-ГН относят к третьему иммунопатологическому (малоиммунному) типу БПГН. Несмотря на клинические различия, все варианты ANCA-ГН объединяет сходство морфологических изменений в почках. ANCA-ассоциированный ГН (или почечный васкулит) представляет собой малоиммунный (отсутствие иммунных депозитов в ткани почки) фокальный и сегментарный некротизирующий ГН со склонностью к образованию полулуний, часто разной степени зрелости, с образованием которых в большинстве случаев связано быстропрогрессирующее течение почечной недостаточности [6, 7, 11, 15, 20, 31].

Морфологическим субстратом ANCA-БПГН является некротизирующее воспаление капилляров клубочков, выраженная пролиферация париетальных эпителиальных клеток с интенсивным формированием экстракапиллярных клеточных или фиброзно-клеточных полулуний с последующим коллапсом капилляров клубочка. Под влиянием воспаления подоциты меняют свой фенотип на моноцитоподобный, подвергаются микроворсинчатой трансформации, способствующей их фиксации к ГБМ с образованием сращений между клубочком и капсулой. Образование полулуний стимулируется проникновением фибрина и других белков плазмы через разрывы ГБМ в просвет капсулы Шумлянского–Боумена. Данный процесс сопровождается миграцией Т-клеток, макрофагов и других воспалительных клеток, в частности моноцитов, ускорением освобождения воспалительных медиаторов (факторов роста и хемокинов) в перигломерулярное пространство с развитием интерстициального воспаления. Клеточные полулуния могут окончательно преобразовываться в клеточно-фиброзные или фиброзные с увеличением внеклеточного матрикса и депозитов коллагена. Таким образом, наличие при морфологическом исследовании почечного биоптата рубцовых изменений и фрагментов фиброзных полулуний в полностью либо частично склерозированных клубочках должно вызывать подозрение на предшествовавшее полулунное повреждение клубочков, и, как это уже отмечалось выше, клинический термин БПГН часто взаимозаменяемо используется с патологоморфологическим термином «полулунный гломерулонефрит» [53, 64, 98, 176, 184].

В 2010 г. A.E. Berden et al. предложили гистопатологическую классификацию АNCA-ГН [25], валидизированную затем как непосредственно этими авторами, так и далее в двух многоцентровых исследованиях европейской популяции [25,98] и позже – в популяции пациентов различного этнического происхождения (Япония, Китай, Австралия, США, Нидерланды, Турция) [10, 17, 89, 133, 33, 128, 81, 61, 49, 145].

Предложенная морфологическая классификация АNCA-ГН базируется на определении доминирующего варианта клубочкового повреждения, выявляемого при светооптической микроскопии в момент манифестации болезни, и позволяет формализовать прогностическое значение нефробиопсии на основании определения соотношения потенциально обратимых острых (фибриноидный некроз, клеточные полулуния) и необратимых хронических (участки сегментарного склероза, фиброзные полулуния) изменений [25].

Авторы оценили валидность предложенной ими классификационной системы на материалах наблюдений 100 пациентов с клинически и патогистологически подтвержденным диагнозом ANCA-ГН. В зависимости от количества и характера повреждений клубочков они выделили четыре гистологических типа ANCA-ГН: очаговый, полулунный, склерозирующий и смешанный. При очаговом ГН отсутствуют изменения в большей половине клубочков, при полулунном – более половины клубочков имеют полулуния, при склерозирующем – более половины клубочков глобально склерозированы, при смешанном отсутствует доминирование какого-либо из перечисленных вариантов клубочкового повреждения [25].

Предложенная классификация была оценена авторами с точки зрения ее прогностического значения в условиях современной иммуносупрессивной терапии, и полученные при этом результаты продемонстрировали четкую связь эффекта терапии с характером исходных гистоморфологических изменений почечных клубочков. Так, одногодичная почечная выживаемость в зависимости от гистологического типа ANCA-ГН составила 93% у пациентов с очаговым, 84% – с полулунным, 69% – со смешанным и 50% – со склерозирующим типом. Через 5 лет терминальная стадия ХПН развилась у 30% (n=25) больных, при этом только у 1 (7%) из 14 пациентов с очаговым, у 11 (24%) из 45 – с полулунным, у 6 (46%) из 13 – со смешанным, и у 70% со склерозирующим типом ANCA-ГН [21, 31 33, 34, 37, 48, 123, 220].

При множественном регрессионном анализе, в который были включены возраст, исходная СКФ, гистологический тип ANCA-ГН, проводимая терапия, показано, что пациенты с очаговым типом повреждения (меньшим повреждением почек) имеют более благоприятный почечный исход. Пациенты с полулунным ГН и высокой активностью почечного заболевания даже при тяжелом исходном снижении почечной функции имеют значительный шанс почечного восстановления и меньший риск развития ХПН по сравнению с пациентами со склерозирующим типом. Пациенты при склерозирующем варианте ANCA-БПГН имеют не только наиболее высокий риск развития диализ-потребной ХПН, но и более высокий риск смерти [10, 17, 25, 28, 31, 33, 41, 49, 58, 61, 81, 89, 151].

При морфологическом исследовании биоптата почки у пациентов с почечно-ограниченным васкулитом гломерулосклероз выявляется чаще, чем у пациентов с ГПА или MПA, что может быть обусловлено более поздней диагностикой заболевания в отсутствие экстраренальных проявлений васкулита [47].

Следует подчеркнуть, что не всегда удается установить четкое соответствие между количеством полулуний в клубочках и выраженностью почечной недостаточности при БПГН. С одной стороны, суммарное число почечных клубочков, в которых выявляются полулуния, можно считать решающим в развитии БПГН, с другой – его формирование регистрируют и тогда, когда число клубочковых полулуний не достигает 50 % или они практически отсутствуют.

Кроме того, в предложенной классификации учитывается только гистологический тип повреждения и количество клубочков, вовлеченных в патологический процесс, и не учтены такие гистопатологические характеристики ANCA-ГН, как перигломерулярные и интерстициальные инфильтраты, выраженность интерстиального фиброза, характер и распространенность повреждений сосудов. Следует отметить, что у некоторых ANCA-позитивных пациентов отмечается атипичная морфологическая картина повреждения почек в виде интерстициального нефрита с васкулитом vasa recta в отсутствие повреждения клубочков. В конечном итоге у подобных пациентов могут развиваться классические повреждения, характерные для пауци-иммунного некротизирующего ГН [49, 145].

Известный вклад в сложность фенотипа ANCA-ГН вносит наличие у некоторых пациентов маленьких диспергированных иммунных депозитов в мезангиуме и капиллярах клубочков, обнаруживаемых при электронной микроскопии. В текущей клинической практике данные изменения при наличии положительных ANCA по-прежнему классифицируются как пауци-иммунный ГН [84]. И наконец, остается непонятым также ЭКГН с двойной серопозитивностью – одновременным наличием ANCA и анти-ГБМ антител [115].

С учетом вышеизложенных аргументов необходимы дальнейшие исследования для уточнения значения перечисленных факторов в оценке прогноза выживаемости пациентов и почечной выживаемости при впервые выявленном ANCA-БПГН.

1.5. Быстропрогрессирующий гломерулонефрит, ассоциированный с ANCA-васкулитом: клинический полиморфизм

Клиническая картина ANCA-АВ отличается значительным полиморфизмом, связанным с поражением сосудов разных органов и тканей, в т.ч. кожи, респираторного тракта, сердечно-сосудистой системы, желудочно-кишечного тракта и других систем. Часто наблюдаются неспецифические симптомы, такие как «гриппоподобные состояния» в дебюте заболевания, лихорадка, недомогание, снижение аппетита и потеря массы тела, миалгии, артралгии и мигрирующие артропатии [1, 8, 9, 15, 130]. В течение длительного времени могут отмечаться только продромальные симптомы заболевания в отсутствие клинических признаков поражения конкретных органов и систем, что особенно характерно для 75% ANCA-позитивных пациентов с ГПА [2, 156, 165].

Для ГПА характерна полиморфно-клеточная гранулематозная воспалительная реакция преимущественно в респираторных органах, ЭГПА васкулиту сопутствует периферическая и тканевая эозинофилия, что служит основным отличием этих болезней от ГПА и МПА. В отдельных случаях заболевание, в дебюте соответствующее МПА, впоследствии может приобретать черты ГПА [2, 155, 186].

Как обсуждалось выше, в большинстве случаев (около 90%) активного васкулита выявляются PR3-ANCA или MPO-ANCA, в то время как одновременное их обнаружение встречается чрезвычайно редко и может быть связано с инфекцией или лекарственно-индуцированным васкулитом, которые следует рассмотреть в дифференциальном диагнозе ANCA-АВ [29, 64].

При этом отмечено, что ГПА имеет более тесную ассоциацию с PR3-ANCА (75%) и менее распространенную при ЭГПА (5%), в то время как МРО-ANCA наиболее часто обнаруживаются при изолированном почечном васкулите (70%) и менее часто у пациентов с ГПА (20%). При МПА могут быть обнаружены как PR3-ANCА, так и МРО-ANCA [85].

Необходимо отметить, что отсутствие ANCA, как и системных проявлений васкулита при условии морфологической верификации некротизирующего пауци-иммунного ГН не исключают диагноз ANCA-АВ (изолированный почечный васкулит). Показано, что, несмотря на отсутствие ANCA, клинические проявления болезни и прогноз изолированного почечного васкулита аналогичны наблюдаемым при ANCA-положительном васкулите [47].

С другой стороны, ANCA могут быть выявлены при других аутоиммунных заболеваниях, а также при воспалительных заболеваниях кишечника, особенно при неспецифическом язвенном колите, первичном склерозирующем холангите и аутоиммунном гепатите, инфекционном эндокардите, опухолях легких, туберкулезе и др. [90, 101, 122].

Как уже было подчеркнуто выше, поражение почек является одним из наиболее клинически значимых проявлений ANCA-АВ и, возможно, самым серьезным. Так, при МПА развитие БПГН регистрируют в 90% случаев, при ГПА – в 80% и реже при ЭГПА – до 45% случаев. Следует отметить, что проявления системного васкулита мелких сосудов в дебюте заболевания имеют приблизительно 75% пациентов с ANCA-БПГН. С другой стороны, ANCA-АВ может манифестировать только ANCA-БПГН, при том что симптомы системного процесса появляются позже [53, 101].

Поражение почек проявляется быстрым повышением концентрации креатинина в сыворотке крови (SCr ) на 50% и более за период от нескольких дней до 3 месяцев на фоне острого нефритического иногда в сочетании с нефротическим синдромом. Терминальная ХПН может развиваться в пределах очень короткого периода времени, особенно при поздней диагностике заболевания и, соответственно, несвоевременной терапии, что сопряжено с увеличением смертности [98, 101, 130, 175, 184].

ANCA-ассоциированный васкулит служит наиболее частой причиной ОПН для лиц пожилого возраста. Различия в течении и исходе заболевания между пожилыми и молодыми пациентами остаются спорными. В ряде исследований показано, что пожилые пациенты имеют более тяжелые органные поражения, наиболее восприимчивы к вторичной инфекции, в результате чего имеют худший прогноз заболевания по сравнению с более молодыми пациентами. ANCA-AВ у пожилых часто протекает с распространенным поражением легких, что способствует развитию последующей легочной инфекции на фоне иммуносупрессивной терапии. Возраст и легочная инфекция – независимые предикторы смерти. Все это затрудняет лечение и заставляет взвешивать все риски и преимущества при решении вопроса об иммуносупрессивной терапии [35, 109, 121, 177].

Тяжесть почечного повреждения определяет как выживаемость больного, так и почечную выживаемость. Показано, что почечный прогноз (исход) не зависит от типа ANCA-антител и может скорее определяться возрастом пациента и состоянием почечной функции к моменту установления диагноза. Представлены также доказательства, что титр ANCA может коррелировать с риском рецидива болезни [85], хотя специфические параметры, характеризующие этот риск и их применение в клинической практике, представляются спорными [181].

По результатам мета-анализа 22 исследований, в который были включены 950 пациентов, R. Birck et al. не подтвердили целесообразность динамического определения титров ANCA[27].

ANCA-ГН особенно тяжело протекает в случаях МПА, протекающего с антителами к PR3. Гломерулонефрит при ЭГПА характеризуется более доброкачественным течением [2].

В большинстве случаев ANCA-ГН развивается как одно из клинических проявлений системного ANCA-АВ, однако, как уже отмечено выше, в ряде случаев он может протекать и как изолированный почечный васкулит, который всевозрастающее число исследователей относят к МПА.

Эта точка зрения базируется в первую очередь на представлении, что снижение исходной СКФ и ее последующее восстановление обусловлены острым потенциально обратимым повреждением почек (фибриноидный некроз и клеточные полулуния). В то же время об отдаленном прогнозе (к 12–18-му месяцу болезни) предпочтительно судить по исходному числу сохранных клубочков или таким хроническим необратимым их изменениям, как фиброзные полулуния и тубулярная атрофия. Полагают, что процент нормальных клубочков является сильным и, возможно, лучшим предиктором благоприятного ближайшего и отдаленного почечного исхода, в то время как процент глобально склерозированных клубочков ассоциирован с неблагоприятным прогнозом [5, 6, 7, 10, 16, 17, 25, 38, 41].

1.6. Лечение ANCA-ассоциированного быстропрогрессирующего гломерулонефрита

Лечение ANCA-ассоциированных системных васкулитов и осложняющего их пауци-иммунного некротизирующего (быстропрогрессирующего) гломерулонефрита относится к числу важнейших и до настоящего времени не вполне решенных вопросов.

В эпоху, предшествовавшую внедрению в клиническую практику современной патогенетической терапии, эти заболевания рассматривались как фатальные, в течение первого года болезни большинство больных имело летальный исход. Но и в настоящее время, когда разработаны подходы к терапии ANCA-АВ, свойственные им поражение жизненно важных органов и неуклонно прогрессирующее течение делают их прогноз весьма серьезным [6, 9, 12, 45, 53, 66].

Современное лечение системных васкулитов включает три этапа: инициальную терапию, или индукцию ремиссии, поддерживающую терапию и лечение рецидивов заболевания (эскалационная терапия).

Целью индукционной терапии является подавление активности болезни и предупреждение, устранение и/или минимизация органных поражений. Поддерживающая терапия направлена на сохранение достигнутой при индукции ремиссии и предупреждение рецидивов васкулита, а лечение рецидивов преследует ту же цель, что и инициальная терапия [1, 71, 73, 92, 117, 206].

Старт современной патогенетической терапии ANCA-АВ приходится на 1973 г., когда A. Fauci и S. Wolff [52, 92] опубликовали первые результаты лечения циклофосфамидом (ЦФ) в суточной дозе 2 мг/кг в комбинации с преднизолоном 18 больных гранулематозом Вегенера. Тринадцать из них достигли ремиссии заболевания. Последующие исследования в этом направлении показали, что частота ремиссии на фоне указанной терапии составляет 75%, годичная выживаемость больных – 80% [52, 86].

Внедрение в клиническую практику терапевтических режимов с длительным применением высоких доз кортикостероидов (КС), в т.ч. с использованием пульс-терапии метилпреднизолоном, в сочетании с ЦФ привело к тому, что ANCA-АВ, ранее считавшийся фатальным или острым и жизнеугрожающим заболеванием с 6-месячной средней выживаемостью, стал рассматриваться как хроническая болезнь, протекающая с постепенным вовлечением в патологичесткий процесс различных органов. И при этом на первый план выступили, с одной стороны, рецидивирующее течение ANCA-АВ, обусловленное персистирующей активностью болезни, с другой – побочные эффекты проводимой терапии. Именно это и определило направление дальнейших изысканий в области терапии ANCA-АВ в целом и осложняющего их паци-иммунного некротизирующего гломерулонефрита в частности [22, 71, 73, 77, 80, 141].

Нежелательные побочные явления длительной терапии КС и ЦФ, подчас ограничивающие выживаемость пациентов, относятся к числу существенных проблем, во многом осложняющих лечение ANCA-васкулитов. Длительное применение ЦФ в высокой кумулятивной дозе чревато миелотоксическим эффектом с развитием тяжелой лейкопении и/или возникновением фатальных оппортунистических инфекций, частота которых может достигать 46%. Кроме того, терапия ЦФ сопряжена с высоким риском развития опухолей (2,8%), особенно мочевого пузыря, и бесплодия (до 56%) [86].

При этом показано, что токсические эффекты ЦФ оказываются ярче и протекают тяжелее у пациентов старше 60 лет, что связывают с более высокой чувствительностью костного мозга к действию препарата в пожилом возрасте, и это требует более взвешенного подхода к терапии данной категории больных [29, 90, 92, 99, 121, 130, 206].

В связи с вышесказанным ряд исследований в области терапии ANCA-ассоциированных васкулитов направлен на поиски оптимальной тактики применения ЦФ. С этой целью были сопоставлены результаты перорального применения ЦФ и его внутривенного введения в более низкой кумулятивной дозе. В контролируемом рандомизированном исследовании CYCLOPS, включавшем 149 пациентов, сравнили эффективность перорального и внутривенного введения этого препарата. При пероральном введении ЦФ назначался в суточной дозе 2 мг/кг веса на срок 3 месяца, внутривенно он вводился болюсно в дозе 15 мг/кг веса трижды с интервалом 2 недели и далее 1 раз в 3–4 недели также трижды. Различий в частоте ремиссий между группами к 9-му месяцу терапии не выявлено. Они развивались с частотой 88 и 87% соответственно. При этом при пероральноим применении ЦФ лейкопения наблюдалась несколько чаще, тогда как различий в частоте серьезных осложнений и в т.ч. инфекций не выявлено. Рецидивы заболевания возникали статистически значимо чаще при внутривенном применении ЦФ – в 39 против 20% при пероральном введении [20, 22, 50, 71, 74, 77].

Таким образом, важным выводом изложенного исследования было отсутствие преимущества перорального применения ЦФ перед внутривенным в отношении купирования активности заболевания. Правда, при внутривенном применении препарата, как отмечено выше, наблюдалось более частое рецидивирование болезни, что могло быть объяснено более низкой (почти на 50%) при этом пути введения куммулятивной дозой ЦФ. С другой стороны, имея в виду более высокую кумулятивную дозу при пероральном приеме ЦФ, нельзя не отметить, что в случаях, когда она превышает 36 г, возрастает вероятность развития онкологических процессов и инфекционных осложнений [71, 74, 206].

Серьезным шагом на пути эволюции патогенетической терапии ANCA-ассоциированных васкулитов стало введение в клиническую практику наряду с пероральными КС и ЦФ уже отмеченной выше пульс-терапии метилпреднизолоном, обеспечивающей возможность эффективного и безопасного воздействия на пауци-иммунный некротизирующий гломерулонефрит еще до его морфологической верификации [50, 60, 67, 92].

Сравнению эффективности пульс-терапии метилпреднизолона и применения плазмафереза при этом тяжелом почечном повреждении посвящено рандомизированное клиническое исследование MEPEX. Основанием к применению плазмафереза в этом исследовании стали данные о важной патогенетической роли и повреждающем эффекте ANCA в механизме развития почечного ANCA-АВ, а также представления о возможном сочетании действия этих антител с влиянием других гуморальных факторов (ряд цитокинов и свертывающих факторов), также играющих определенную роль в патогенезе повреждения почек при данном заболевании. Результаты MEPEX выявили определенные преимущества применения плазмафереза перед пульсовым введением метилпреднизолона. Так через 3 месяца лечения плазмаферезом ГД был прекращен у 69% больных из числа в нем нуждавшихся. В то же время под влиянием пульс-терапии метилпреднизолоном лечение ГД удалось прекратить лишь у 49% пациентов. С другой стороны, в случаях, когда потребность в ГД отсутствовала и уровень SCr был ниже 500 мкмоль/л, преимущественный эффект плазмафереза не выявлялся и его применение не оказывало дополнительного положительного влияния на восстановление функции почек [18, 91].

В последние годы в качестве альтернативного режима индукционной терапии ANCA-васкулитов в ее составе начал применяться препарат ритуксимаб (RTx), одобренный для лечения этих заболеваний в 2011 г. в США, а в 2013-м – в России. Ритуксимаб представляет собой химерное моноклональное антитело к СD20 на поверхности зрелого В-лимфоцита. Его соединение с СD20-антигеном активирует апоптоз В-лимфоцита через антитело- и комплемент-зависимую цитотоксичность. Поскольку СD20 не экспрессируется на стволовых гемопоэтических и нормальных плазматических клетках, полагают, что действие RTx не должно сопровождаться токсическими эффектами, свойственными традиционной иммуносупрессии [72, 106, 100, 117].

В литературе RTx обсуждается как компонент индукционной терапии, который может применяться либо только в сочетании с KC, либо он добавляется к комбинации последних с ЦФ. При этом он может вводиться как при впервые выявленном ANCA-васкулите, в т.ч. при его рефрактерных формах, так и при рецидивирующем течении заболевания [5, 12, 109, 200, 197, 206].

Изучению эффективности RTx в составе индукционной терапии посвящены два рандомизированных контролированных исследования – RITUXVAS (Rituximab versus cyclophosphamide in ANCA-associated renal vasculitis) и RAVE (Rituximab in ANCA-associated vasculitis) [100, 170].

В исследование RITUXVAS [100] были включены 44 пациента. До начала исследования всем им проводился плазмаферез и дважды вводился метилпреднизолон по 1000 мг. Ритуксимаб вводился 33 пациентам одновременно с пульсами метилпреднизолона, и при этом его первое и третье введения сочетались с болюсным введением ЦФ, при том что перорально применялся преднизолон с постепенной его отменой к 5–6-му месяцу терапии. Пациенты контрольной группы также получали пульсы метилпреднизолона и КС внутрь. В течение 3–6 месяцев вводился ЦФ, который в последующем заменялся азатиоприном (АЗА). Частота ремиссий в обеих группах была сопоставимой (76 и 82% соответственно). При этом ремиссии возникали в среднем к 90-му и 94-му дню терапии соответственно в группах RTx и сравнения. Медиана СКФ к началу лечения составляла 20 и 12 мл/мин соответственно. При этом тяжелое поражение почек наблюдалось у меньшинства больных, так что только 8 из 33 пациентов, леченных с применением RTx, нуждались в лечении ГД, и у 5 из них в дальнейшем ГД был прекращен. В группе сравнения только 1 из 11 пациентов нуждался в лечении ГД, но у него почечная недостаточность оказалась необратимой. Частота тяжелых осложнений в обеих группах была сопоставимой (42 и 36% соответственно). Летальность составляла 18% в обеих группах. Рецидивы возникали в срок более 12 месяцев после достижения ремиссии, и их частота была равной 14 и 10% соответственно. Таким образом, это исследование не выявило каких-либо существенных преимуществ применения RTx по сравнению с традиционной индукционной терапией [100].

В исследование RAVE [170] были включены 197 пациентов с впервые выявленным или рецидивирующим ANCA-АВ, причем преобладающим заболеванием был гранулематозный полиангиит. Из исследования были исключены пациенты с тяжелыми легочными кровотечениями или тяжелым нарушением функции почек, т.е. больные с уровнем SCr выше 354 мкмоль/л. Пациенты были рандомизированы к лечению либо RTx (375 мг/м2 еженедельно в течение 4 недель), либо ЦФ (2 мг/кг/сут внутрь) в течение 3 месяцев с последующим переходом на прием АЗА (2 мг/кг/сут). Все пациенты получали по 3 пульсовых введения метилпреднизолона (по 1000 мг) с дальнейшим приемом преднизолона внутрь в одинаковом режиме. В этом исследовании, как и в предыдущем, не выявлено различий между двумя группами в частоте полных ремиссий к 6-му месяцу лечения, а также в частоте побочных эффектов и рецидивов. В то же время в связи со специальным подбором больных это исследование не позволяет ответить на вопрос об эффективности RTx при индукционной терапии тяжелых вариантов ANCA-васкулитов, протекающих с тяжелым поражением легких или с тяжелыми вариантами пауци-иммунного некротизирующего ГН [170].

Таким образом, накопленные к настоящему времени данные показывают, что эффективность RTx при инициальной терапии ANCA-ассоциированного пуци-иммунного ГН эквивалентна эффективности ЦФ в отсутствие различий в частоте побочных явлений. Именно эти данные дали основание авторам Клинических практических рекомендаций KDIGO по лечению гломерулонефритов сформулировать показания к применению RTx в комбинации с КС в качестве альтернативного режима инициальной терапии у пациентов с менее тяжелыми формами заболевания или с противопоказаниями к ЦФ [14, 19, 20, 110, 121, 171, 172]. Вместе с тем вопрос о возможностях терапевтической эффективности RTx при тяжелых вариантах пауци-иммунного некротизирующего ГН остается открытым.

Остается нерешенным также вопрос об оптимальной поддерживающей терапии ANCA-АВ, целью которой, как отмечено выше, является стабилизация достигнутой ремиссии заболевания и предупреждение его рецидивов. Последние весьма характерны для ANCA-васкулитов и возникают с частотой 15–65% в течение 39–46 месяцев, и их предупреждение требует продолжения поддерживающей терапии в течение не менее 2–4 лет, а нередко и пожизненно. Именно это диктует необходимость поиска наименее токсичных иммуносупрессивных препаратов и минимизации применения КС [73, 90, 91, 168, 188].

Вопросы об оптимальном режиме и длительности поддерживающей терапии, как и о предикторах рецидивов васкулита, до настоящего времени остаются предметами изучения. При этом важным указанием на угрозу рецидива, по общему признанию, является выявление на фоне достигнутой ремиссии ANCA -серопозитивности. Так, по данным J.S. Sanders et al. [154], частота рецидивов у ANCA-позитивных в 2,5 раза превышает таковую при ANCA-негативности к 6-му месяцу терапии [152]. Кроме того, появились также данные, что в случаях применения RTx в качестве предиктора рецидива можно рассматривать также восстановление уровня В-лимфоцитов в периферической крови [32].

В качестве компонентов поддерживающей терапии ANCA-васкулитов в настоящее время рассматриваются применяемые в комбинации с минимальными дозами КС, ЦФ, АЗА, микофенолаты, а в последние годы и RTx [73].

Цитотоксические препараты (микофенолаты, азатиоприн) в такого рода исследованиях назначались после окончания индукционной терапии, проводившейся в течение 3–6 месяцев с использованием RTx [72, 105]. При этом было показано, что микофенолата мофетил (ММФ) равно эффективен ЦФ [87], а в исследовании IMPROVE азатиоприн оказался эффективнее ММФ [83].

На протяжении последних 5 лет в центре внимания исследователей находится вопрос о применении RTx с целью предупреждения развития рецидивов ANCA-васкулитов. Большинство авторов рекомендуют превентивное назначение этого препарата в дозе 0,5–1,0 с интервалом в 4–6 месяцев в течение 2–4 лет [64, 65, 72, 168, 160].

Получены данные, согласно которым такое повторное назначение RTx привело к драматическому снижению числа рецидивов ANCA-васкулитов [5, 12, 32, 67, 73, 100]. Так, по данным R.M. Smith et al. [168] при введении RTx в качестве поддерживающей терапии каждые 6 месяцев в течение 2 лет частота рецидивов заболевания снизилась с 50 до 11%, при дальнейшем наблюдении эти различия стали еще более разительными (85 и 26%).

По данным L. Guillevin? для предупреждения рецидива васкулита RTx оказался существенно эффективнее АЗА. По данным этого автора, на фоне введения RTx по достижении ремиссии, если препарат вводился трехкратно по 0,5 г каждые 6 месяцев, рецидивы заболевания отмечены лишь к 28-му месяцу и только у 3,6% пациентов, в то время как, при применении АЗА в те же сроки они возникали у 27% пациентов [73].

В заключение обзора литературы следует подчеркнуть, что ANCA-ассоциированные васкулиты представляют собой группу относительно редких заболеваний, объединяемых общностью патогенеза, патоморфологии, клинических проявлений и серьезностью прогноза. Они стали предметом интенсивного изучения на протяжении второй половины ХХ в., и к настоящему времени не вызывает сомненийй, что эти заболевания отличают многофакторность патогенеза, многие звенья которого пока остаются недостаточно изученными и мультисистемность патологии с локализацией ее в разных органах и тканях, что нередко определяет жизнеугрожаюий характер течения ANCA-АВ.

Поражение почек с развитием пауци-иммунного некро­тизирующего (быстропрогрессирующего) гломеруло­неф­рита весьма характерно для этих заболеваний и во многом определяет прогноз болезни. Современная терапия ANCA-БПГН, базирующаяся главным образом на применении высоких доз кортикостероидов и цитостатиков, способствовала переводу этих заболеваний из категории острых жизнеугрожающих в хронические прогрессирующие с исходом в терминальную ХПН в течение 5-летнего срока примерно в 30% случаев. При этом возможность применения указанной терапии нередко оказывается ограниченной в связи с высоким риском развития фатальных осложнений. Все это делает весьма актуальным исследования, направленные на дальнейшее изучение ANCA-АВ, оптимизацию и создание новых терапевтических подходов к их лечению.


Литература


  1. Бекетова Т.В. АНЦА-ассоциированный системный васкулит. Нефрология. Национальное руководство краткое издание. М., 2014. С. 287–304.
  2. Бекетова Т.В. Гранулематоз с полиангиитом, патогенетически связанный с антинейтрофильными цитоплазматическими антителами: особенности клинического течения.Научно-практическая ревматолология. 2012;50(6):19–28.
  3. Бекетова Т.В. Современная классификация системных васкулитов. Терапевтический архив. 2014;5:92–98.
  4. Бекетова Т.В., Фролова Н.Ф., Столяревич Е.С., Волков М.Ю., Котенко О.Н., Александрова Е.Н. Проблемы диагностики и лечения АНЦА-ассоциированных системных васкулитов: в фокусе АНЦА-негативный PAUCI-иммунный гломерулонефрит. Научно-практическая ревматология. 2016;5(54):С.543–552.
  5. Бекетова Т.В. Перспективы применения Ритуксимаба при васкулитах, ассоциированных с антинейтрофильными цитоплазматическими антителами. Научно-практическая ревматология. 2010;4(1):80–90.
  6. Бирюкова Л.С., Столяревич Е.С., Кальянова Е.В., Фролов А.В., Тырин В.В., Артюхина Л.Ю., Фролова Н.Ф., Федорова Н.Д., Томилина Н.А. Опыт лечения быстропрогрессирующего гломеркулонефрита при АНЦА-Ассоциированом васкулите.Нефрология и диализ. 2013;15(4):306–307.
  7. Егорова Е.Т., Томилина Н.А., Бирюкова Л.С. Быстропрогрессирующий гломерулонефрит при АНЦА-ассоциированных васкулитах: течение, эффективность лечения, прогноз. 2007;9(3):228–239.
  8. Захарова Е.В. ANCA-ассоциированные и криоглобулинемические васкулиты диагностика и лечение. Нефрология и гемодиализ. 2005;1(7):6–25.
  9. Захарова Е.В., Яковлев В.Н., Виноградова О.В., Шейх Ж.В., Алексеев В.Г. АНЦА-ассоциированные васкулиты с поражением легких и почек: клинико-морфологическая характеристика, лечение, исходы. Клиническая медицина. 2013;7:38–43.
  10. Козловская Н.Л., Гордовская Н.Б., Коротчаева Ю.В.Нефрит, ассоциированный с антинейтрофильными цитоплазматическими антителами. Клинические рекомендации. Нефрология. М., 2016.
  11. Кривошеев О.Г. Поражение почек при васкулитах, ассоциированных с антителами к цитоплазме нейтрофилов (ANCA-васкулитах). Рациональная фармакотерапия в нефрологии. М., 2006:293–306.
  12. Мухин Н.А., Семенкова Е.Н., Кривошеев О.Г. и др. Применение ритуксимаба при тяжелых АНЦА-ассоциированных системных васкулитах. Клиническая нефрология. 2010;2:40–45.
  13. Мухин Н.А., Козловская Л.В., Насонов Е.Л. и др. Клиническое значение и патогенетические аспекты поражения почек, связанного с антителами к цитоплазме нейтрофилов. Вестник РАМН. 1995;5:34–9.
  14. Новиков П.И., Моисеев С.В., Буланов Н.М., Макаров Е.А. Современные подходы к терапии АНЦА-ассоциированных системных васкулитов. Клиническая Нефрология. 2014;1:42–49.
  15. Семенкова Е.Н., Бекетова Т.В., Коган Е.А. и др. Современные представления о микроскопическом полиартериите. Тер. арх. 1995;5:39–41.
  16. Томилина Н.А., Бирюкова Л.С., Егорова Е.Т., Суханов А.В., Столяревич Е.С., Купавцева О.А., Федорова Н.Д., Фролов А.В., Трушкин Р.Н., Куренкова Л.Г. Быстропрогрессирующий гломерулонефрит при АНЦА-ассоциированных васкулитах: течение, эффективность лечения, прогноз. Терапевтический архив. 2008;80(6):15–24.
  17. Фролова Н.Ф., Волгина Г.В., Бирюкова Л.С., Столяревич Е.С., Томилина Н.А. Клинико-морфологические корреляции и прогноз при разных гистоморфологических вариантах быстропрогрессирующего ANCA-ассоциированного гломерулонефрита. Лечебное дело. 2016;4:68–77.
  18. Фролова Н.Ф., Лосс К.Э., Подкорытова О.Л., ВетшеваМ.С., Волгина Г.В. и др. Новые аферезные технологии в лечении ANCA-ассоциированного васкулита. Неотложная медицина. 2016;33(4):40–44.
  19. Фролова Н., Бирюкова Л., Столяревич Е., Фролов А., Волгина Г.В., Томилина Н. Применение ритуксимаба при лечении ANCA-ассоциированного васкулита: опыт одного центра. Материалы IV конгресса ассоциации нефрологов новых независимых государств. 2016. С. 52–53.
  20. Шилов Е.М., Козловская Н.Л., Коротчаева Ю.В. Клинические рекомендации по диагностике и лечению быстропрогрессирующего гломерулонефрита (экстракапиллярного гломерулонефрита с полулуниями). Нефрология. 2015;19(6):73–82.
  21. Yoshihiro A., Eri M., Shoichi F., Midori H., Shinya K., Joichi U. еt al. Evidence-based clinical practice guidelines for rapidly progressive glomerulonephritis 2014. Clin. Exp. Nephrol. 2016;20.(3):322–41.
  22. Adu D., Pall A., Luqmani R.A., Richards N.T., Howie A.J., Emery P., et al. Controlled trial of pulse versus continuous prednisolone and cyclophosphamide in the treatment of systemic vasculitis. QJM.1997;90:401–9.
  23. Basu N., Watts R., Bajemal J. et al. EULAR pointstoconsider in the development of classification and diagnosticcriteria in systemic vasculitis. Ann. Rheum.Dis. 2010;69(10):1744–1750.
  24. Beaudreuil S., Lasfargues G., Lauériere L., El Ghoul Z., Fourquet F., Longuet C., et al. Occupational exposure in ANCA-positive patients: A case-control study. Kidney Int. 2005;67:1961–6.
  25. Berden A.E., Ferrario F., Hagen E.C. et al. Histopathological classification of ANCA-associated glomerulonephritis. J. Am. Sos. Nephrol. 2010;21:1628–1636.
  26. Berden A.E., Nolan S.L., Morris H.L., et al. Anti-plasminogen antibodies compromise fibrinolysis and associate with renal histology in ANCA-associated vasculitis. J. Am. Soc. Nephrol. 2010;21:2169–2179.
  27. Birck R., Schmitt W.H., Kaelsch I.A., et al. Serial ANCA determinations for moni- toring disease activity in patients with ANCA-associated vasculitis: systematic review.Am. J. Kidney Dis. 2006;47:15–23.
  28. Birukova L., Stolyarevich E.C., Frolova N.F., et al. The long-term renal outcome in patients with ANCA-associated vasculitis, predictive value of kidney biopsy. Posters in ERA EDTA congress London. 2015;28(31):108 p.
  29. Bonaci-Nikolic B., Andrejevic S., Pavlovic M., et al. Prolonged infections associated with antineutrophil cytoplasmic antibodies specific to proteinase 3 and myeloperoxidase: diagnostic and therapeutic challenge. Clin. Rheumatol. 2010;29:893–904.
  30. Booth, A.D., Almond, M.K., Burns, A. et al. Outcome of ANCA-associated renal vasculitis: a 5-year retrospective study. Am. J. Kidney Dis. 2003;41:776–784.
  31. Bjørneklett R., Sriskandarajah S., Bostad L. Clin J. Prognostic Value of Histologic Classification of ANCA-Associated Glomerulonephritis. Am. Soc. Nephrol. 2016;7(11–12):2159–2167. Epub 2016, Oct. 18.
  32. Cartin-Ceba R., Golbin J.M., Keogh K.A., et al. Rituximab for remission induction and maintenance in refractory granulomatosis with polyangiitis (Wegener’s): ten-year experience at a single center. Arthritis Rheum. 2012;64(11):3770–3778.
  33. Chang D.Y., Wu L.H., Liu G., Chen M., Kallenberg C.G., Zhao M.H. Re-evaluation of the histopathologic classification of ANCA-associated glomerulonephritis: a study of 121 patients in a single center. Nephrol. Dial. Transplant. 2012;27(6):2343–234.
  34. Chen Min M.D., Yu Feng M.D., Zhang Y., Zhao M.D. ANCA-associated vasculitides-advances in pathogenesis and treatment. Nat. Rev. Rheumatol. 2010;6:653–64.
  35. Chen М. Antineutrophil Cytoplasmic Autoantibody-Associated Vasculitis in Older Patients. PhD. Medicine. 2008;87(4):203–209. Doi: 10.1097/MD.0b013e31817c744b
  36. Chen M., Kallenberg С.G. The environment, geoepidemiology and ANCA-associated vasculitides. Autoimmun. Rev. 2010;9:A293–A298.
  37. Chen M., Kallenberg C.G., Zhao M.H. ANCA-negative pauci-immune crescentic glomerulonephritis. Nat. Rev. Nephrol. 2009;5(6):313–318.
  38. Xu J., Pan X.X., Shen P.Y., Li X., Ren H., Chen X.N., Ni L.Y., Zhang W., Chen N. Histopathological Classification and Renal Outcome in Patients with Antineutrophil Cytoplasmic Antibodies-associated Renal Vasculitis: A Study of 186 Patients and Metaanalysis. Rheumatol. 2017;44(3):304–313. Doi: 10.3899 jrheum.160866. Epub 2016, Dec. 15.
  39. Chow K., Wang A.Y., Mac-Moune L.F., Wong T.Y., Li P.K. Rapid recurrence of ANCA-negative pauci-immune vasculitis after cadaveric renal transplantation. Am. J. Kidney Dis. 2001;38:E3.
  40. Clean A., Savage C.O.S. The immunopathogenesis of vasculitis Revised International Chapel HiLL. Consensus Conference Nomenclature of Vasculitides Arthritis Rheum. 2013;65(I–II):117–130.
  41. Córdova-Sánchez B.M., Mejía-Vilet J.M., Luis E., et al. Clinical presentation and outcome prediction of clinical, serological, and histopathological classification schemes in ANCA-associated vasculitis with renal involvement. Clin. Rheumatol. Published. 2016. Doi 10.1007/s10067-016-3195-z.
  42. Corral-Gudino L., Borao-Cengotita-Bengoa M., Lerma-Marquez J.L., del Pino-Montes J. Differences in the incidence of microscopic polyangiitis and granulomatosis with polyangiitis (Wegener’s). J. Rheumatol. 2011;38:2494–2496.
  43. Craven A., Robson J., Ponte C., Grayson P.C., Suppiah R., et al. ACR/EULAR-endorsed study to develop Diagnostic and Сlas- sification Criteria for Vasculitis (DCVAS). Clin. Exp. Nephrol. 2013;17(5):619–621.
  44. Csernok E., Lamprecht P., Gross W.L. Clinical and immunological features of drug-induced and infection-induced proteinase 3-antineutrophil cytoplasmic antibodies and myeloperoxidase-antineutrophil cytoplasmic antibodies and vasculitis. Curr. Opin. Rheumatol. 2010;22:43–48.
  45. Davenpor T.A. “False positive” perinuclear and cytoplasmic anti-neutrophil cytoplasmic antibody results leading to misdiagnosis of Wegener’s granulomatosis and/or microscopic polyarteritis. Clin.Nephrol.1992;37:124–130.
  46. Davies D.J., Moran J.E., Niall J.F., et al. Segmental necrotizing glomeruloneph-ritis with antineutrophil antibody: possible arbovirus aetiology? Br. Med. J. 1982;285:6342–606.
  47. Eisenberger U., Fakhouri F., Vanhille P., et al. ANCA-negative pauci-immune renal vasculitis: histology and outcome. Nephrol. Dial. Transplant. 2005;20(7):1392–1399.
  48. Ellis A. Natural history of Bright’s disease: clinical, histological and experimental observations. Lancet. 1942;1:1–7.
  49. Ellis C.L., Manno R.L., Havill J.P., Racusen L.C., Geetha D. Validation of the new classification of pauci-immune glomerulonephritis in a United States cohort and its correlation with renal outcome. BMC Nephrol. 2013;14:210 р.
  50. EUVAS (European Vasculitis Study Group). Pulse versus daily oral cyclophosphamide for induction of remission in antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis: a randomized trial. Ann. Intern. Med. 2009;150(10):670–80.
  51. Ewert B.H., Jennette J.C., Falk R.J. Antimyeloperoxidase antibodies stimulate neutrophils to damage human endothelial cells. Kidn.Int. 1992;41(2–3):75–83.
  52. Ernst Е., Girndt M., Pliquett R.U. A case of granulomatosis with polyangiitis complicated by cyclophosphamide toxicity and opportunistic infections: choosing between Scylla and Charybdis. BMC Nephrology. 2014;15:284.
  53. Falk R.J., Hogan S., Carey T.S., Jennette J.C. Clinical course of anti-neutrophil cytoplasmic autoantibody-associated glomerulonephritis and systemic vasculitis. The Glomerular Disease Collaborative Network. Ann. Intern. Med. 1990;113(9):656–63.
  54. Falk R.J., Jennette J.C. ANCA disease: Where is this field heading? J. Am. Soc. Nephrol. 2010;21:745–52.
  55. Falk R.J., Jennette J.C. Anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies with specificity for myeloperoxidase in patients with systemic vasculitis and idiopathic necrotizing and crescentic glomerulonephritis. N. Engl. J. Med. 1988;318:1651–1657.
  56. Falk R.J., Terrell R.S., Charles L.A., et al. Anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies induce neutrophils to degranulate and produce oxygen radicals in itro. Proc. Natl. Acad. Sci. 1990;87(11):4115–9.
  57. Fauci A.S., Wolff S.M. Wegener’s granulomatosis: studies in eighteen patients and a review of the literature. Medicine (Baltimore).1973;52(6):535–61.
  58. Ferrario F., Vanzati A., Pagni F. Pathology of ANCA-associated vasculitis. Clinical and Experimental Nephrology. 2013;17(5):652–658.
  59. Finkielman J.D., Lee A.S., Hummel A.M., et al. ANCA are detectable in nearly all patients with active severe Wegener s granulomatosis. Am. J. Med. 2007;120(7):643.е9-643.е14.
  60. Flossmann O., Berden A., de Groot K., et al. European Vasculitis Study Group. Long-term patient survival in ANCA-associated vasculitis. Ann.Rheum.Dis 2011;70(3):488–494.
  61. Ford S.L., Polkinghorne K.R., Longano A., et al. Histopathologic and clinical predictors of kidney outcomes in ANCA-associated vasculitis.American Journal of Kidney Diseases. 2014;63(2):227–235.
  62. Franssen C.F., Stegeman C.A., Kallenberg C.G., et al . Antiproteinase 3-and antimyeloperoxidase-associated vasculitis. Kidney Int. 2000;57:2195–2206.
  63. Fujimoto S., Watts R., Kobayashi S., et al. Comparison of the epidemiology of anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis between Japan and the UK. Rheumatology. 2011;50:1916–1920.
  64. Furuta S., Jayne D.R. Antineutrophil cytoplasm antibody-associated vasculitis: recent developments. Kidney Int. 2013;84:244–249.
  65. Geffriaud- Ricouard C., Noël L.H., Chauveau D., Houhou S., Grünfeld J.P., Lesavre P. Clinical spectrum associated with ANCA of defined antigen specificities in 98 selected patients.Clin.Nephrol. 1993;39:125–136.
  66. Gibson A., Stamp L.K., Chapman P.T., O’Donnell J.L. The epidemiology of Wegener’s granulomatosis and microscopic polyangiitis in a Southern Hemisphere region. Rheumatology (Oxford). 2006;45:624–628.
  67. Gopaluni S. Clinical Trials in Vasculitis/Current Treatment Options in Rheumatology. 2016;2(2):161–177.
  68. Goldschmeding R., Tervaert J.W., Gans R.O., еt al. Different immunological specificities and disease associations of c-ANCA and p-ANCA. Neth. J. Med. 1990;36:114–116.
  69. González-Gay M.A., Garcia-Porrua C., Guerrero J., Rodriguez-Ledo P., Llorca J. The epidemiology of the primary systemic vasculitides in northwest Spain: implications of the Chapel Hill Consensus Conference definitions. Arthritis. Rheum. 2003;49:388–393.
  70. Gou S.J., Yuan J., Chen M., Yu F., Zhao M.H. Circulating complement activation in patients with anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Kidney Int. 2013;83:129–37.
  71. De Groot K., Adu D., Savage C.O. The value of pulse cyclophosphamide in ANCA. Vasculitis: meta-analysis and critical review. Nephrol. Dial. Transplant. 2001;16:2018–27.
  72. Guerry M.J., Brogan P., Bruce I.N., et al. Recommendations for the use of rituximab in anti-neutrophil cytoplasm antibody-associated vasculitis. Rheumatology (Oxford). 2012;51(4):634–643.
  73. Guillevin L. Treatment of severe and/or refractory ANCA-associated vasculitis. Curr. Rheumatol. Rep. 2014;16(8):430.
  74. Guillevin L., Cordier J.F., Lhote F., Cohen P., Jarrousse B., Royer I., et al. Prospective, multicenter, randomized trial comparing steroids and pulse cyclophosphamide versus steroids and oral cyclophosphamide in the treatment of generalized Wegener’s granulomatosis. Arthritis. Rheum. 1997;40:2187–98.
  75. Hall J.B., Wadham B.M., Wood C.J., et al. Vasculitis and glomerulonephritis: a subgroup with an antineutrophil cytoplasmic antibody. Aust. NZJ Med. 1984;14:277–278.
  76. Hao J., Wang C., Gou S.J., et al. The association between anti-plasminogen antibodies and disease activity in ANCA-associated vasculitis. Rheumatology (Oxford). 2014;53:300–306.
  77. Haubitz M., Frei U., Rother U., Brunkhorst R., Koch K.M. Cyclophosphamide pulse therapy in Wegener’s granulomatosis. Nephrol. Dial. Transplant. 1991;6:531–5.
  78. Harper L., Morgan M.D., Walsh M., et аl. Pulse versus daily oral cyclophosphamide for induction of remission in ANCA-associated vasculitis: Long- term follow-up. Ann. Rheum. Dis. 2012;71:955–960.
  79. Harada T. ANCA-negative pauci-immune crescentic glomerulonephritis complicated with recurrent massive gastrointestinal hemorrhage. Clin. Exp. Nephrol. 2005;9:174–178.
  80. Hedger N., Stevens J., Drey N., Walker S., Roderick P. Incidence and outcome of pauci-immune rapidly progressive glomerulonephritis in Wessex, UK: a 10-year retrospective study. Nephrol. Dial. Transplant. 2000;15:1593–1599.
  81. Hilhorst M., Wilde B., van Breda V.P., et al. Limburg Renal Registry. Estimating renal survivalusing the ANCA-associated GN classification. J. Am. Soc. Nephrol. 2013;24:1371–75.
  82. Hilhorst M., Winckers K., Wilde B., et al. Patients with antineutrophil cytoplasmic antibodies associated vasculitis in remission are hypercoagulable. J. Rheumatol. 2013;40:2042–2046.
  83. Hiemstra T., Walsh M., Schmitt W., Jayne D. Randomised controlled trial of mycophenolate mofetil versus azathioprine for maintenance therapy in ANCA-Associated vasculitis (IMPROVE).1–4th Nov. American. Society of Nephrology. 2009:SA-FC331A.
  84. Holle J.U., Hermann K., Gross W.L., Csernok E. Comparative analysis of different commercial ELISA systems for detection of anti-neutrophil cytoplasm antibodies in ANCA-associated vasculitides. Clin. Exp. Rheumatol. 2012;30(70):66–9.
  85. Homeister J.W., Jennette J.C., Falk R.J. Immunologic mechanisms of vasculitis. Seldin and Giebisch’s The Kidney. Amsterdam: Elsevier. 2013:2817–2846
  86. Hoffman G.S., Kerr G.S., Leavitt R.Y., et al. Wegener granulomatosis: an analysis of 158 patients. Ann. Intern. Med. 1992;116(6):488–498.
  87. Hu W., Liu C., Xie H., Chen H., Liu Z., Li L. Mycophenolate mofetil versus cyclophosphamide for inducing remission of ANCA vasculitis with moderate renal involvement. Nephrol. Dial. Transplant. 2008;23:1307–1312.
  88. Hung P.H. Poor renal outcome of antineutrophil cytoplasmic antibody negative pauci-immune glomerulonephritis in Taiwanese. J. Formos. Med. Assoc. 2006;105:804–812.
  89. Iwakiri T., Fujimoto S., Kitagawa K., Furuichi K., et al. Validation of a newly proposed histopathological classification in Japanese patients with anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated glomerulonephritis. BMC Nephrology. 2013;14:125–133.
  90. Jayne D. The clinical presentation and treatment of renal vasculitis. Reumatology and the Kidney. 2013:163–180. Doi :10.1093/med/9780199579655.003.0064
  91. Jayne D.R. Randomized trial of plasma exchange or high-dosage methylprednisolone as adjunctive therapy for severe renal vasculitis. J. Am. Soc. Nephrol. 2007;18:2180–2188.
  92. Jayne D., Pusey C. European Vasculitis Study Group. A randomized trial of maintenance therapy for vasculitis associated with antineutrophil cytoplasmic autoantibodies. N. Engl. J. Med. 2003;349(1):36–44.
  93. Jennette C.J., Falk R.J., Mc Gregor J.G. Comprehensive Clinical Nephrology 5th Edition. Renal and systemic valculitis. 2015.1320 р.
  94. Jennette J.C. Revised International Chapel Hill Consensus Conference Nomenclature of Vasculitides. Arthritis & Rheumatism. 2013;65(1):11.
  95. Jennette J.C. Nomenclature of systemic vasculitides. Proposal of an international consensus conference. Arthritis Rheum. 1994;37(2):187–92.
  96. Jennette J.C., Falk R.J. Pathogenesis of antineutrophil cytoplasmic autoantibody-mediated disease. Nat. Rev. Rheumatol. 2014;10:463–73.
  97. Jennette J.C., Hoidal J.H., Falk R.J. Specificity ofanti-neutrophil cytoplasmic autoantibodiesfor proteinase 3. Blood. 1990;75:2263–2264.
  98. Jennette J.C. Rapidly progressive crescentic glomerulonephritis. Kidney Int. 2003;63(3):1164–77.
  99. Jones R.B., Furuta S., Tervaert J.W, et al. European Vasculitis Society (EUVAS). Rituximab versus cyclophosphamide in ANCA-associated renal vasculitis: 2-year results of a randomised trial. Ann. Rheum. Dis. 2015;74(6):1178–1182.
  100. Jones R.B., Tervaert J.W., Hauser T., et al. Rituximab versus cyclophosphamide in ANCA-as-sociated renal vasculitis. N. Engl. J. Med. 2010;363:211–220.
  101. Jha V. Renal and systemic vasculitis. Comprehensive Clinical Nephrology. St. Louis, MO: Saunders. 2010. 292–307 p.
  102. Kain R., Exner M., Brandes R., Ziebermayr R., Cunningham D., et al. Molecular mimicry in pauci-immune focal necrotizing glomerulonephritis.Nat. Med. 2008;14:1088–1096.
  103. Kain R. What is the evidence for antibodies to LAMP-2 in the pathogenesis of ANCA associated small vessel vasculitis? Curr. Opin. Rheumatol. 2013;25:26–34.
  104. Kain R., Tadema H., Mc Kinnas E.F. High prevalence of autoantibodies to HLAMP-2 in anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. J. Am. Soc. Nephrol. 2012;23:556–566.
  105. Kallenberg C.G., Heeringa P. Complement is crucial in the pathogenesis of ANCA-associated vasculitis. Kidney Int. 2013;83:16–8.
  106. Kallenberg C.G. Pathogenesis and treatment of ANCA-associated vasculitides. Clin. Exp. Rheumatol. 2015;33:11–14.
  107. Kambham N. Crescentic glomerulonephritis: an update on pauci-immune and anti-GBM diseases.Adv. Anat. Pathol. 2012;19(2):111–124.
  108. Kanda T., Tanio H., Wu C., Nishihara H., Nogaki F., Ono T. Churg-Strauss syndrome with severe granulomatous angiitis and crescentic glomerulonephritis, which developed during therapy with a leukotriene receptor antagonist. Clinical and Experimental Nephrology. 2010;14(6):602–607.
  109. KDIGO. Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Glomerulonephritis Work Group. KDIGO clinical practice guideline for glomerulonephritis. Kidney Int. Suppl. 2012;2:139–274.
  110. KDIGO. Clinical Practice Guideline for Glomerulonephritis. Kidney International supplements. Nephrology and dialysis. 2014.127–136 р.
  111. Kessenbrock K., Krumbholz M., Schönermarck U., et al. Netting neutrophils in autoimmune small-vessel vasculitis. Nat. Med. 2009;15:623–625.
  112. Koldingsnes W. Epidemiology of Wegener’s granulomatosis in northern Norway. Arthritis Rheum. 2000;43:2481–2487.
  113. Lamprecht P., Wieczorek S., Epplen J.T., Ambrosch P., Kallenberg C.G.M. Granuloma formation in ANCA-associated vasculitides. APMIS. 2009;117(127):32–36.
  114. Lee S, Hayashi H., Maeda M. et al. Environmental factors producing autoimmune dysregulation – chronic activation of T cells caused by silica exposure. 2012;217:743–748.
  115. Levy J.B., Hammad T., Coulthart А., Dougan T., Pusey C.D. Clinical features and outcome of patients with both ANCA and anti-GBM antibodies. Kidney International. 2004;66(4):1535–1540.
  116. Lie J. Vasculitis, to 1815 to1 991. Classification and diagnostic specificity. J. Rheumatol. 1991;19:83–89.
  117. Little M.A., Pusey C.D. Glomerulonephritis due to antineutrophil cytoplasmic antibodiy- associated vasculitis: An update on approaches to management. Nephrology. 2005;10:368–76.
  118. Lyons P.A., Rayner T.F., Trivedi S., Holle J.U., Watts R.A. et al. Genetically distinct subsets within ANCA-associated vasculitis. N. Engl. J. Med. 2012;367:214–223.
  119. Markiewski M.M. Complement and coagulation: strangers or partners in crime?Trends Immunol.2007;28:184–192.
  120. Mahr A., Moosig F., Neumann T., Szczeklik W., Taille C., Vaglio A., et al. Eosinophilic granulomatosis with polyangiitis (Churg-Strauss): evolutions in classification, etiopathogenesis, assessment and management. Current opinion in rheumatology. 2014;26:16–23.
  121. Manno L. Older patients with ANCA-associated vasculitis and dialysis dependent renal failure: are trospective study. BMC Nephrology. 2015;16:88.
  122. Millet A., Pederzoli-Ribeil M., Guillevin L., Witko-Sarsat V., Mouthon L. Antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitides. Is it time to split up the group? Ann. Rheum. Dis. 2013;72(8):1273–79.
  123. Minz R.W., Chhabra S., Joshi K., Rani L., Sharma N., Sakhuja V., et al. Renal histology in pauci-immune rapidly progressive glomerulonephritis: 8-year retrospective study. Indian J. Pathol. Microbiol. 2012;55:28–32.
  124. Mohammad A.J., Jacobsson L.T., Westman K.W., Sturfelt G., Segelmark M. Incidence and survival rates in Wegener’s granulomatosis, microscopic polyangiitis, Churg-Strauss syndrome and polyarteritis nodosa. Rheumatology.2009;48:1560–5.
  125. Mohammad A.J., Jacobsson L.T., Mahr A.D., Sturfelt G., Segelmark M. Prevalence of Wegener’s granulomatosis, microscopic polyangiitis, polyarteritis nodosa and Churg–Strauss syndrome within a defined population in southern Sweden. Rheumatology. 2007;46:1329–1337.
  126. Moran S., Little M.A. Renal transplantation in antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Curr. Opin. Rheumatol. 2014;26:37–41.
  127. Mukhtyar C., Flossmann O., Hellmich B. et al. European Vasculitis Study Group (EUVAS) (2008). Outcomes from studies of antineutrophil cytoplasm antibody associated vasculitis: a systematic review by the European League Against Rheumatism systemic vasculitis task force. Ann. Rheum. Dis. 2008;67(7):1004–10.
  128. Muso E. Evaluation of the newly proposed simplified histological classification in Japanese cohorts of myeloperoxidase-anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated glomerulonephritis in comparison with other Asian and European cohorts. Clin. Exp. Nephrol. 2013;17(5):659–62.
  129. Moroni G., Binda V., Leoni A., Raffiotta F., Quaglini S., Banfi G., Messa P. Clin. Exp Rheumatol.Predictors of renal survival in ANCA-associated vasculitis. Validation of a histopatological classification schema and review of the literature. 2015;33(2,89):56–63.
  130. Nachman P.H., Denu-Ciocca C.J. Vasculitides. In: Lerma E.V., Bern J.S., Nissenson A.R., editors. Current Diagnosis and Treatment: Nephrology and Hypertension. New York. 2008. 265–275 р.
  131. Nakazawa D., Tomaru U., Suzuki A., et al. Abnormal conformation and impaired degradation of propylthiouracil-induced neutrophil extracellular traps: implications of disordered neutrophil extracellular traps in a rat model of myeloperoxidase antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Arthritis Rheum. 2012;64:3779–3787.
  132. National Kidney Disease Education Program. Estimating GFR. http://nkdep.nih.gov/lab-evaluation/gfr/estimating.shtml. Accessed October 8, 2013. http://nephron.com/epi_equation.
  133. Nohr E., Girard L., James M., Benediktsson H. Validation of a histopathologic classification scheme for antineutrophil cytoplasmic antibody-associated glomerulonephritis. Human Pathology. 2014;45:(7):1423–1429.
  134. Ntatsaki E., Carruthers D., Chakravarty K., et al. BSR and BHPR guideline for the management of adults with ANCA-associated vasculitis. Rheumatology.201;53:2306–2309.
  135. Ntatsaki E., Watts R.A., Scott D.G. Epidemiology of ANCA-associated vasculitis. Rheum. Dis. Clin. North. Am. 2010;36:447–461.
  136. O’Donnell J.L., Stevanovic V.R., Frampton C., Stamp L.K., Chapman P.T. Wegener’s granulomatosis in New Zealand: evidence for a latitude-dependent incidence gradient. Intern Med J. 2007;37:242–246.
  137. Ormerod A.S., Cook M.C. Epidemiology of primary systemic vasculitis in the Australian Capital Territory and south-eastern New South Wales. Intern. Med. J. 2008;38:816–823.
  138. Ozaki S. ANCA-associated vasculitis: diagnostic and therapeutic strategy. Allergol Int. 2007;56:87–96.
  139. Passen P., Tervaert J.W., Heeringa P. Mechanisms of vasculitis: How Pauci-Immune is ANCA-Associated renal Vasculitis. Exp. Nephrol. 2007;105:e10–e16.
  140. Pagnoux C. Churg-Strauss syndrome: evolving concepts. Discov. Med. 2010;9:243–52.
  141. Pendergraft W.F. Trojan horses: drug culprits associated with antineutrophil cytoplasmic autoantibody (ANCA) vasculitis. Curr. Opin. Rheumatol. 2014;26:42–49.
  142. Peschel A., Basu N., Benharkou A., et al. Autoantibodies to h LAMP-2 in ANCA-negative pauci-immune focal necrotizing GN. J. Am. Soc. Nephrol. 2014;25:455–463.
  143. Popa E.R., Stegeman C.A., Kallenberg C.G., Tervaert J.W. Staphylococcus aureus and Wegener’s granulomatosis. Arthritis Res. 2002;4:77–79.
  144. Popa E.R., Tervaert J.W.C. The relation between Staphylococcus aureus and Wegener’s granulomatosis: current knowledge and future directions. Intern Med. 2003;42:771–780.
  145. Quintana L.F., Peréz N.S., Sousa E., Lida M.R., Meryl H. Griffiths., Manel Solé., David J. ANCA serotype and histopathological classification for the prediction of renal outcome in ANCA-associated glomerulonephritis. Nephrol. Dial. Transplant. 2014;29(9):1764–1769.
  146. Rao D.A., Wei K., Merola J.F., O’Brien W.R., Takvorian S.U., Dellaripa P.F., Schur P.H. Myeloperoxidase-antineutrophil Cytoplasmic Antibodies (MPO-ANCA) and Proteinase 3-ANCA without Immunofluorescent ANCA Found by Routine Clinical Testing. J. Rheumatol. 2015;42(5):847–852.
  147. Rao J.K., Allen N.B., Pincus T. Limitations of the 1990 American College of Rheumatology classification criteria in the diagnosis of vasculitis. Ann. Intern. Med. 1998;1(129):345–52.
  148. Rees A.J., Cameron J.S. Crescentic glomerulonephritis. Oxford Textbook of Clinical Nephrology. 1st ed. Oxford: Oxford University Press. 1992. 418–38 р .
  149. Rihova Z., Maixnerova D., Jancova E., et al. Silica and asbestos exposure in ANCA-associated vasculitis with pulmonary involvement. Renal Failure. 2005;27(5):605–608.
  150. Rihova Z., Jancova E., Merta M., Rysava R., Reiterova J., Zabka J., Tesar V. Long-term outcome of patients with antineutrophil cytoplasmic autoantibody-associated vasculitis with renal involvement. Kidney Blood Press. Res. 2005;28:144–152.
  151. Robson J., Doll H., Suppiah R., et al. Damage in the ANCA-associated vasculitides: long-term data from the European Vasculitis Study group (EUVAS) therapeutic trials. Ann. Rheum. Dis. 2013;74:177–184.
  152. Rocha-Parise M., Santos L.M, Damoiseaux J.G., et al. Lymphocyte activation in silica-exposed workers. Int. J. Hyg. Environ Health. 2014;217:586–591.
  153. Roth A.J., Brown M.C., Smith R.N., et al. Anti-LAMP-2 antibodies are not prevalent in patients with antineutrophil cytoplasmic autoantibody glomerulonephritis. J. Am. Soc. Nephrol. 2012;23:545–555.
  154. Sanders J.S., Huitma M.G., Kallenberg C.G., et al. Prediction of relapses in PR3-ANCA-associated vasculitis by assessing responses of ANCA titres to treatment. Rheumatology (Oxford) 2006;45:724–729.
  155. Sampathkumar K. ANCA negative pauci-immune glomerulonephritis with systemic involvement. Indian J. Nephrol. 2010;20(1):43–47.
  156. Savage C.O., Pottinger B.E., Gaskin G., et al. Autoantibodies developing to myeloperoxidase and proteinase 3 in systemic vasculitis stimulate neutrophil cytotoxicity toward cultured endothelial cells.Am J. Pathol. 1992;141:335–342.
  157. Schilder A.M. Wegener’s granulomatosis vasculitis and granuloma. Autoimmun. Rev. 2010;9(7):483–7.
  158. Schönermarck U., Gross W.L., de Groot K. Treatment of ANCA-associated vasculitis. Nat. Rev. Nephrol.2014;10:25–36.
  159. Scott D.G., Watts R.A. Epidemiology and clinical features of systemic vasculitis. Clin. Exp. Nephrol. 2013;17:607–610.
  160. Seo P., Specks U., Keogh K.A. Efficacy of rituximab in limited Wegener’s granulomatosis with refractory granulomatous manifestations. J. Rheumatol. 2008;35(10):2017–23.
  161. Seo P., Stone J.H. The antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitides. Am. J. Med. 2004;117(1):39–50.
  162. Shah S., Havill J., Rahman M.H., Geetha D.A. historical study of American patients with anti-neutrophil cytoplasmic antibody negative pauci-immune glomerulonephritis. Clin. Rheumatol. 2016;35(4):953–960.
  163. Sharma A., Nada R., Naidu G.S., et al. Pauci-immune glomerulonephritis: does negativity of antineutrophilic cytoplasmic antibodies matters? Int. J. Rheum. Dis. 2016;19(1):74–81.
  164. Silva de Souza A.W. Autoantibodies in systemic vasculitis. Front Immunol. 2015;6:184.
  165. Silva S.V., Ferreira J.P., Carvalho S., et al. Antineutrophil cytoplasmatic antibody positive systemic vasculitis in a patient treated with propylthiouracil. Acta. Reumatol. Port. 2013;38:302–305.
  166. Sinico R.A., Di Toma L., Maggiors U. et al. Renal involvement in Churg-Straus syndrome.Am. J. Kidney Dis. 2006;47:770–779.
  167. Shah S., Geetha D. Place in therapy of rituximab in the treatment of granulomatosis with polyangiitis and microscopic polyangiitis. 7August. 2015;4:173–183.
  168. Smith R.M., Jones R.B., Guerry M.J., et al. Rituximab for remission maintenance in relapsing antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Arthritis. Rheum. 2012;64(11):3760–3769.
  169. Stegeman C.A., Tervaert J.W., Sluiter W.J., Manson W.L., de Jong P.E., Kallenberg C.G. Association of chronic nasal carriage of Staphylococcus aureus and higher relapse rates in Wegener granulomatosis. Ann. Intern. Med. 1994;120:12–17.
  170. Stone J.H., Merkel P.A., Spiera R., et al. RAVE-ITN Research Group: Rituximab versus cyclophosphamide for ANCA-associated vasculitis. N. Engl. J. Med. 2010;363:221–232.
  171. Shah S., Hruskova Z., Segelmark M., et al. Treatment of Severe Renal Disease in ANCA Positive and Negative Small Vessel Vasculitis with Rituximab. Am. J. Nephrol. 2015;41:296–301.
  172. Shah S., Geetha D. Place in therapy of rituximab in the treatment of granulomatosis with polyangiitis and microscopic polyangiitis. 2015;4:173–183.
  173. Suneja M., Baiswar S., Vogelgesang S.A. Hydralazine associated pauci-immune glomerulonephritis. J. Clin. Rheumatol. 2014;20(2):99–102.
  174. Suppiah R. A cross-sectional study of the Birmingham Vasculitis Activity Score version 3 in systemic vasculitis. Rheumatology (Oxford). 2011;50:899–905.
  175. Suzuki K., Nagao T., Itabashi M., et al. A novel autoantibody against moesin in the serum of patients with MPO-ANCA-associated vasculitis. Nephrol. Dial.Transplant. 2013;29:1168–1177.
  176. Syed R., Rehman A., Valecha G., et al. Pauci-immune crescentic glomerulonephritis: an ANCA-associated vasculitis. Biomed Res Int. 2015. 402826. Doi: 0.1155/2015/402826.
  177. Tan C.D., Smith A., Rodriguez E.R. Systemic necrotizing vasculitis induced by isoniazid. Cardiovasc. Pathol. 2014;23:181–182.
  178. Taylor S.R., Salama A.D., Joshi L., Pusey C.D., Lightman S.L. Rituximab is effective in the treatment of refractory ophthalmic Wegener’s granulomatosis. Arthritis Rheum. 2009;60(5):1540–1547.
  179. Tarzi R.M. Vasculitis: risks and rewards of treating elderly patients with vasculitis. Nat. Rev. Nephrol. 2011;7:253–255.
  180. Ten Holder S.M., Joy M.S., Falk R.J. Cutaneous and systemic manifestations of drug-induced vasculitis. Ann. Pharmacother. 2002;36:130–147.
  181. Tervaert J.W., Damoiseaux J. Fifty years of antineutrophil cytoplasmic antibodies (ANCA) testing: do we need to revise the international consensus statement on testing and reporting on ANCA? APMIS. 2009;117(127):55–59.
  182. Tesar V., Hruskova Z. ANCA-associated Renal Vasculatis – an update Contrib. Nephrol., Basel Karger. 2013;181:216–228.
  183. Tian C., Kosoy R., Nassir R., et al. European population genetic substructure: further definition of ancestry informative markers for distinguishing among diverse European ethnic groups. Mol. Med. 2009;15:371–383.
  184. Van Daalen E., Ferrario F., Noël L.H., Waldherr R., Hagen E.C., Bruijn J.A., Bajema I.M. Twenty-five years of RENHIS: a history of histopathological studies within EUVAS. Nephrol. Dial. Transplant.2015;30:31–36.
  185. Villacorta J., Diaz-Crespo F., Acevedo M., et al. Antineutrophil cytoplasmic antibody negative pauci-immune extracapillary glomerulonephritis. Nephrology (Carlton). 2016;21(4):301–7.
  186. Wang, F., Min Chen М., ZhaoМ-Н. Neutrophil degranulation in antineutrophil cytoplasmic antibodies-negative pauci-immune crescentic glomerulonephritis. J. Nephrol. 2009.
  187. Watts R., Scott D. Vasculitis and related rashes. ABC of rheumatology, 4th Ed. by A. Adebajo. Blackwell. 2010;23:148–155.
  188. Watnick S., Dirkx T. Kidney disease in Current Medical Diagnosis & Treatment 2015, M. A. Papadakis, S. J. McPhee, and M. W. Rabow, Eds., McGraw-Hill, New York, NY, USA. 2014.
  189. Watts R.А. Vasculitis in Clinical Practice. Springer. 2010. Р. 198.
  190. Watts R.A., Lane S.E., Ben-tham G., Scott D.G. Epidemiology of systemic vasculitis – a 10 year study/Arthritis Rheum. 2000. 43. Р. 4. 22–427.
  191. Watts R.A., Mooney J., Skinner J., Scott D.G., Macgregor A.J. The contrasting epidemiology of granulomatosis with polyangiitis (Wegener's) and microscopic polyangiitis. Rheumatology (Oxford). 2012. 51. 5. Р. 926–931.
  192. Watts R.A., Gonzalez-Gay M.A., Lane S.E., Garcia-Porrua C., Bentham G., Scott D.G. Geoepidemiology of systemic vasculitis: comparison of the incidence in two regions of Europe. Ann. Rheum. Dis. 2001;60:170–172.
  193. Watts R.A., Lane S.E., Bentham G., Scott D.G. Epidemiology of systemic vasculitis: a ten-year study in the United Kingdom. Arthritis Rheum. 2000;43:414–419.
  194. Watts R.A., MacGregor A.J., Mackie S.L. HLA allele variation as a potential explanation for the geographical distribution of granulomatosis with polyangiitis. Rheumatol-ogy (Oxford). 2015;54:359–362.
  195. Wen Y.K., Chen M L. Transformation from tubulointerstitial nephritis to crescentic glomerulonephritis: an unusual presentation of ANCA-associated renal vasculitis. Ren Fail. 2006;28:189–191.
  196. Weyand C.M., Goronzy J.J., , Weyand C.M. Medium-and large-vessel vasculitis. N. Engl. J. Med. 2003;349:160–169.
  197. Weiner M., Goh S.M., Mohammad A.J., et al. Outcome and treatment of elderly patients with ANCA-associated vasculitis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2015;10:1128–1135.
  198. Wiesner O., Russell K.A., Lee A.S. et al. Antineutrophil cytoplasmic antibodies reacting with human neutrophil elastase as a diagnostic marker for cocaine-induced midline destructive lesions but not autoimmune vasculitis. Arthritis. Rheum. 2004;50:2954–2965.
  199. Wijngaarden R.A., van Rijn L., Hagen E.C., Watts R.A., et al. Hypotheses on the etiology of antineutrophil cytoplasmic autoantibody associated vasculitis: the cause is hidden, but the result is known. J. Clin. Am. Soc. Nephrol. 2008;3:237–252.
  200. Wilde B., Рaassen P., Witzke O., Tervaert J. New pathophysiological insights and treatment of ANCA associated vasculitis. Kidney International. 2011;59:599–612.
  201. Witko-Sarsat V.A., Lesavre P., Lopez S., et al. large subset of neutrophils expressing membrane proteinase 3 is a risk factor for vasculitis and rheumatoid arthritis. JASN. 1999;10(6):1224–1233.
  202. Woude F J., Rasmussen N., Lobatto S., Wiik A., Permin H., van Es L.A., et al. Autoantibodies against neutrophils and monocytes: Tool for diagnosis and marker of disease activity in Wegener's granulomatosis. Lancet. 1985;1:425–429.
  203. Wolff S.M., Fauci A.S., Horn R.G., Dale D.C. Wegener's granulomatosis. Ann. Intern. Med. 1974;81(4):513–525.
  204. Xiao Н., Hu Р., Falk R.J., Jennette J.С. Overview of the Pathogenesis of ANCA-Associated Vasculitis. Kidney Dis. 2015;1:205–215.
  205. Xu P., Lin S., Wei L., et al. Antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis associated with Epstein-Barr virus infection: a case report and review of the iterature. XInfection. 2014;42:591–594.
  206. Zand L., Specks U., Sethi S., Fervenza F.C. Treatment of ANCA-associated vasculitis: new therapies and a look at old entities. Adv. Chronic. Kidney Dis. 2014;2:182–193.


Об авторах / Для корреспонденции


Фролова Н.М. – к.м.н., зав. 2-м нефрологическим отделением, врач-нефролог ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ»; Москва, Россия.


Бионика Медиа