Мембранозный гломерулонефрит в практике терапевта


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/nephrology.2021.3.66-77

И.Т. Муркамилов, И.С. Сабиров, В.В. Фомин, Ж.А. Муркамилова, И.О. Кудайбергенова, Ф.А. Юсупов

1) Кыргызская государственная медицинская академия им. И. К. Ахунбаева, Бишкек, Кыргызстан; 2) ГОУ ВПО «Кыргызско-Российский славянский университет», Бишкек, Кыргызстан; 3) ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова», Москва, Россия; 4) Ошский государственный университет, Ош, Кыргызстан
Мембранозный гломерулонефрит (мГЛН) характеризуется диффузным утолщением и изменением структуры базальной мембраны клубочков вследствие субэпителиальной и интрамембранозной депозиции иммунных комплексов и отложения матриксного материала, продуцируемого пораженными подоцитами. Являясь самой частой причиной развития нефротического синдрома у взрослых, мГЛН подразделяется на первичные (идиопатические) и вторичные формы. К первоочередной задаче обследования пациента с впервые выявленным мГЛН относится исключение вторичных причин заболевания. Первичный мГЛН развивается чаще у лиц молодого и среднего возраста. Вторичный мГЛН чаще развивается у детей. При мГЛН необходимо исследование на антиген А2-рецептора фосфолипазы (PLA2R1), антитела к нему из подкласса иммуноглобулинов G (IgG) и определение числа клеток в инфильтрате клубочков. Лицам старших возрастных групп в случае отсутствия депозитов с анти-PLA2R1-антителами и при наличии отложений IgG2 и IgG1 необходимо дополнительное исследование на наличие паранеопластического процесса.

Введение

В структуре нефрологической патологии мембранозный гломерулонефрит (мГЛН) сохраняет свою актуальность вследствие высокой заболеваемости, значительной частоты осложнений, приводящих к терминальной хронической почечной недостаточности [1–3]. Патогенетические механизмы развития мГЛН и нефротического синдрома изучались на протяжении десятилетий. Последние годы ознаменовались широким внедрением молекулярно-генетических методов исследования в нефрологию, что привело к расширению горизонтов в понимании патогенеза многих заболеваний почек и мГЛН в т.ч. [4]. Настоящее исследование служит продолжением ранее опубликованной нами работы по проблемам мГЛН [5]. Цель данной обзорной статьи состояла в проведении анализа литературных данных по вопросам эпидемиологии, этиопатогенеза мГЛН с акцентом на клинико-прогностическое значение антигенов А2-рецептора фосфолипаза (PLA2R1, M-type phospholipase A2 receptor) и тромбоспондина 1-го типа (THSD7A, Thrombospondin Type 1 Domain Containing 7A), особенно при вторичных формах этого аутоиммунного заболевания, в контексте междисциплинарного подхода. Нами был выполнен поиск в базе данных научной электронной библиотека eLIBRARY.RU (на русском языке) и PubMed (на английском). В обзор были включены 90 российских и зарубежных источников литературы.

Эпидемиология мГЛН

Распространенность вторичного мГЛН различается в зависимости от социально-экономических, географических условий и расовой принадлежности. По данным отдельных работ, первичный мГЛН у лиц моложе 20 лет встречается редко [2]. Несмотря на широкое распространение вторичного мГЛН в детской популяции, заболевание также хорошо изучено и во взрослой когорте. В 20–25% случаев вторичный мГЛН выявляется среди лиц в возрасте 30–50 лет [6, 7]. При ретроспективном исследовании, охватившем 7-летний период, В.А. Добронравов и соавт. установили морфологический диагноз мГЛН у 201 пациента, причем у 50 (24,9%) пациентов была определена вторичная этиология процесса. Распространенность всех случаев мГЛН среди всех индикационных нефробиопсий и случаев морфологически подтвержденных гломерулопатий составила 12,8 и 14% соответственно, из которых первичный мГЛН – 9,6 и 10,4% соответственно [2]. Часто мГЛН, дебютируя в зрелом и пожилом возрасте, требует исключения вторичных причин своего развития, в частности онкологического процесса [8]. По данным И.Е. Тареевой, Н.А. Мухина и Е.М. Шилова, именно при мГЛН достаточно часто (у 30–35% больных) удается установить связь с известными антигенами: вирусом гепатита В, опухолевыми и лекарственными агентами [9]. Ранее Z. Rihova et al. провели ретроспективное исследование 1874 пациентов, которым были выполнены нефробиопсия в 1991–2002 гг. При этом наличие морфологических признаков мГЛН отмечено у 129 пациентов. Как указывают исследователи, в 45% случаев мГЛН было вызвано лекарственными средствами. В 27,5 и 17,5% случаев причиной развития мГЛН послужили аутоиммунное заболевание и сόлидные опухоли [10]. В другом исследовании среди 240 пациентов с мГЛН было выявлено наличие злокачественной опухоли во время нефробиопсии, у 24 развился онкологический процесс в течение года [11]. По данным И.А. Бобылевой и соавт., примерно в 1/4–1/3 случаев мГЛН развивается вторично на фоне других заболеваний в результате отложения в клубочках иммунных комплексов, содержащих экзогенные антигены и антитела к ним [12]. Важно отметить, что результаты разных почечных регистров могут в значительной степени различаться в зависимости от критериев диагноза и показаний к выполнению нефробиопсии. Е.С. Столяревич, Т.Р. Жилинская и В.В. Варясин провели ретроспективный анализ данных регистра 6387 нефробиопсий за 7 лет (с 2013 по 2020 г.) в МГНЦ на базе ГКБ № 52. Было установлено, что наиболее частым (32,5% случаев) показанием к нефробиопсии был именно нефротический синдром. В структуре клубочковой патологии первичные гломерулопатии выявлены у 51% пациентов, доля мГЛН составила 10,5% [3]. По другим данным, среди проанализированных результатов 1955 нефробиопсий частота первичных гломерулопатий составила 72,3%. Как отмечают исследователи, в структуре первичных гломерулопатий преобладали фокально-сегментарный гломерулосклероз и мГЛН [13]. T. Stehlé et al. опубликовали результаты многоцентрового исследования гломерулопатий, ассоциированных с саркоидозом. Так, среди 26 пациентов с саркоидозом и морфологически верифицированным гломерулярным повреждением наиболее часто регистрировалcя мГЛН, составив 42% случаев. В этом наблюдении [14] мГЛН характеризовался гранулярными субэпителиальными отложениями иммуноглобулинов и комплемента вдоль базальной мембраны при иммунофлуоресцентном исследовании (рис. 1). В препарате эпителиоидная и гигантоклеточная гранулема, примыкающая к неизмененным клубочкам. Иммунофлуоресцентный анализ выявил субэпителиальные гранулярные отложения иммуноглобулина G (IgG), по данным T. Stehlé et al. (2014).

67-1.jpg (107 KB)Примечательно, что в данном наблюдении ремиссия гломерулярного заболевания и саркоидоза после специфической терапии (стероидной и/или иммуносупрессивной) зарегистрирована практически у всех пациентов. Как указывают исследователи, гистопатологический спектр гломерулопатий, наблюдаемых при саркоидозе, разнообразен и лишь в 35% случаев оба заболевания развиваются одновременно [14]. В исследовании A.R. Berliner et al. отмечено, что частота поражения почек у пациентов с саркоидозом варьируется от 10 до 20% [15].

Рассматривая вопросы эпидемиологии вторичного мГЛН, следует отметить роль лекарственных препаратов. Наиболее частое развитие мГЛН ассоциируется с приемом солей золота, Д-пеницилламина [16]. Так, в одном из наблюдений 17,3% пациентов с ревматоидным артритом имели мГЛН, достоверно коррелировавший с приемом солей золота и пеницилламина [17]. В другом исследовании мГЛН обнаружен у 31% пациентов, большинство из которых получали лечение солями золота и Д-пеницилламином [18]. Кроме того, имеются свидетельства того факта, что мГЛН часто развивается у лиц, получавших бутиламин, Д-пеницилламин и соли золота [19].

Причины и механизмы развития мГЛН

По данным многочисленных исследований, мГЛН развивается в результате повреждения базальной мембраны клубочков и характеризуется субэпителиальным и интрамембранозным отложением иммунных комплексов, а также накоплением матриксного материала, продуцируемого пораженными подоцитами [20, 21]. Морфологическая картина мГЛН характеризуется отсутствием клеточной пролиферации, хотя в некоторых случаях отмечается пролиферация мезангиоцитов крайне слабой степени. Отсутствие воспалительной реакции на иммунные комплексы объясняется наследственным или приобретенным дефицитом Fc-рецепторов мезангиоцитов, выступающих в роли макрофагов [20, 21]. Здесь следует подчеркнуть, что в настоящее время различают три популяции мезангиоцитов (межсосудистые клетки): гладкомышечная, макрофагическая и транзиторная (моноциты из кровотока). Мезангиоциты макрофагического типа также несут на своей поверхности компоненты главного комплекса гистосовместимости 2-го типа, необходимые для фагоцитарной функции, плюс La-антиген. Этим объясняются процессы реализации в клубочках иммуновоспалительной реакции и появление протеинурии.

По данным различных авторов, мГЛН чаще заболевают лица мужского пола, причем заболевание у них протекает тяжелее [1, 9, 12]. Традиционно мГЛН подразделяется на первичные (идиопатические) и вторичные формы. Как правило, причиной развития вторичного мГЛН служат аутоиммунные заболевания, злокачественные новообразования [22], системная красная волчанка [23], ревматоидный артрит [24, 25], инфекционные заболевания, вызываемые вирусом гепатита В и С, вирус иммунодефицита человека (ВИЧ) [26], лекарственные препараты, тиреоидит, саркоидоз и др. (см. таблицу). В международных клинических рекомендациях подчеркнуто, что вторичный мГЛН служит результатом специфического поражения клубочков иммунными комплексами, в которые включены экзогенные антигены [6, 27].

68-1.jpg (296 KB)

При вторичных формах мГЛН устранение и/или лечение причины могут способствовать быстрой ремиссии болезни. В настоящее время мГЛН рассматривается как хроническое заболевание различной природы, для которого характерны спонтанные ремиссии (25%) и рецидивы (75%). В клинических рекомендациях развитие ремиссии может быть отсроченным на длительный период времени – до 18–24 месяцев [27]. Примерно 15–30% пациентов с мГЛН переживают один или более рецидивов. Вероятность наступления спонтанных ремиссий и прогрессирования мГЛН зависит от возраста, пола, степени протеинурии и функции почек в момент верификации диагноза [6, 27].

Подоциты и их роль в возникновении мГЛН

Подоциты – это высокоспециализированные клетки клубочков, участвующие в регуляции проницаемости гломерулярного фильтра и поддерживающие форму капилляров, препятствуя их расширению под действием гидравлического давления. Клубочек почки также является узкоспециализированной структурой, обеспечивающей селективную ультрафильтрацию плазмы таким образом, что необходимые белки сохраняются в крови [28]. Суммарная поверхность капилляров клубочков составляет 1,5 м2.

Как показывают исследования, подоциты (эпителиальные клетки, эпителий клубочков) состоят из трех частей: тело клетки, первичные, вторичные и третичные отростки (ножки), с помощью которых они прикрепляются к базальной мембране (рис. 2). В обзорном исследовании Е.Н. Шамитовой и В.О. Романова изложены биологические и патофизиологические аспекты подоцитарной дисфункции [29]. Подоциты (рис. 2, 3b) покрывают капилляры клубочков почек, в которых фильтруется первичная моча. Отфильтрованная моча проходит через проксимальный каналец (рис. 2В). В ранее опубликованной серии обзорных статей подробно изложены структурные и функциональные изменения подоцитов при мГЛН [30, 31]. Как уже упоминалось, подоциты поддерживают архитектонику клубочка, препятствуя прохождению белка в мочевое пространство, а также синтезируют компоненты базальной мембраны клубочков, особенно в постнатальном периоде. Кроме того, подоциты регулируют кровоток в капиллярах клубочков и ингибируют пролиферацию мезангиоцитов путем синтеза ангиотензина (АТ), гистамина, вазопрессина. Третичные отростки (ножки) подоцитов покрывают капилляры, оставляя фильтрационные щели шириной около 40 нм.

69-1.jpg (221 KB)

В них в виде мостика располагается барьер фильтрации тонкая мембрана–щелевая диафрагма [32]. Щелевая диафрагма – это сеточка переплетающихся тончайших нитей из белка нефрина (ширина ячеек – от 4 до 7 нм), представляющая собой барьер для большинства альбуминов и других крупномолекулярных веществ. Щелевая диафрагма содержит структурные белки, тесно связанные с актиновым цитоскелетом посредством внутриклеточно расположенных адаптеров CD2AP (CD2 Associated Protein), ZO-1 (zonula occludens-1), Nck (non-catalytic region of tyrosine kinase) и p130Cas (Crk-associated substrate) [32, 33]. Сигнальные пути от этих молекул щелевой диафрагмы через адаптеры регулируют структуру, механизмы выживания и процессы дифференцировки подоцитов, а также клеточную адгезию. Безусловно, при мГЛН поражение подоцитов сопровождается нарушением щелевой диафрагмы и проявляется слияниям и/или исчезновением малых ножек [34, 35]. Установлено, что CD2AP принимает участие в распознавании области контакта между Т-лимфоцитами и антигенами. В Т-лимфоцитах CD2AP стабилизирует взаимодействие с антигеном, находящимся в клетке, путем усиления кластеризации CD2 и формирования в области сайта взаимодействия цитоскелета, необходимого для поляризации Т-лимфоцитов [36]. Нужно сказать, что CD2AP регулирует цитоскелет подоцитов и стабилизирует фильтрационные щели. По имеющиеся сведениям, повреждение гена CD2AP переключает TGF-β (Transforming Growth Factor Beta) на патологический сигнальный путь, что приводит к активации проапоптозной р38 МАР-киназы (Mitogen Activated Protein kinase) и утрате подоцитов [37, 38]. Также МАР-киназы опосредованно влияют на реализацию программы апоптоза подоцитов, участвуя в регуляции продукции ряда провоспалительных цитокинов [39]. Вероятно, именно по этой причине при вторичном мГЛН развивается феномен подоцитопатии.

В последние годы в литературе обсуждается роль сфинголипидов при гломерулярных болезнях [40]. Как отмечают исследователи, сфинголипиды как компонент липидного слоя плазматической мембраны необходимы для полноценного функционирования подоцитов и являются ключевым элементом барьера клубочковой фильтрации [41]. В частности, накопление сфинголипидов наблюдается при гломерулярных заболеваниях негенетического происхождения. В подоцитах экспрессируется кислотоподобный сфингомиелин фосфодиэстеразы (SMPDL3b, Sphingomyelin phosphodiesterase acid-like 3b), где он модулирует активность кислой сфингомиелиназы и выступает в качестве главного модулятора сигнализирования опасности [41]. Снижение экспрессии SMPDL3b коррелирует с рецидивом протеинурии.

В рамках оптимизации молекулярной диагностики редких наследственных болезней (К.В. Савостьянов, Е.К. Гинтер, 2020) детально изучены молекулярно-генетические аспекты мутации белков щелевой диафрагмы [42]. Как показано на рис. 3, синаптоподин, подопланин, подоцин, подокаликсин и нефрин преимущественно локализуются на поверхности подоцитарных клеток [43].

Подоциты имеют на своей поверхности различные рецепторы к биологическим веществам, а мембрана состоит из толстого слоя отрицательно заряженного гликокаликса. Отрицательный заряд и гидрофильность базальной мембраны клубочков определяются наличием полианионов, таких как гепарансульфат, ламинин, хондроитинсульфат, нидоген и сиаловая кислота. Появление протеинурии связано с уменьшением содержания указанных полианионов. В последние годы появилось следующее сообщение: слияние цитоподий подоцитов с оголениной базальной мембраной клубочков не всегда коррелирует со степенью выраженности протеинурии [44, 45]. В.Г. Сиповский и соавт. изучили возможную взаимосвязь ультраструктурных изменений подоцитов и степени оголения базальной мембраны клубочков при непролиферативной гломерулопатии с клинико-лабораторными показателями состояния гломерулярного фильтра. Среди 37 участников исследования у 17 (45,9%) были выявлены признаки мГЛН. Количественный ультраструктурный стереологический анализ выполнен посредством оценки ширины цитоподий, а также степени оголения базальной мембраны клубочков. Установлено, что при мГЛН абсолютное значение ширины цитоподий было больше, чем при фокально-сегментарном гломерулосклерозе и болезни минимальных изменений [44]. Как уже сказано, ламинин, входящий в состав базальной мембраны клубочков, обеспечивает прикрепление к мембране ножек подоцитов и эндотелиоцитов капилляров. Кроме того, ламинин обеспечивает стабильность базальной мембраны клубочков, а также оказывает влияние на рост и дифференциацию клеток. При мГЛН выявлялось свечение в клубочковой мембране β1-цепи ламинина, которая в норме выявляется у человека только на стадии эмбрионального развития [46]. Авторы указывают, что это обстоятельство связано с экспрессией генов и определяет изменения свойств мембран при мГЛН. Связи и функциональные взаимодействия ламинина в структуре базальной мембраны клубочков были представлены в обзорном исследовании М.М. Батюшина и соавт. [47]. Есть сведения об аутоиммунном характере развития мГЛН. При этом гликопротеины подоцита или β2-ламинин базальной мембраны могут служить антигенами, на которые формируются аутоантитела [48]. Антигеном в этом случае служит поверхностный гликопротеин массой 330 кДa, который в высокой концентрации экспрессируется на эпителии проксимальных канальцев и в меньшей степени на подоцитах. Антитела проходят сквозь базальную мембрану клубочков и, связываясь с данным гликопротеином, образуют иммунные комплексы (субэпителиально) [49]. Следует отметить, что на поверхности подоцитов и их ножек имеется отрицательно заряженный слой гликокаликса, «усиливающий» отрицательный заряд базальной мембраны клубочков. Согласно литературным данным, известно более 30 белков, имеющих отношение к функционированию щелевой мембраны подоцитов [50]. В исследовании итальянских ученых детально изложены и обобщены этиопатогенетические механизмы вторичного мГЛН [51]. Так, поражение подоцитов также приводит к активации локальной ренин-ангиотензин-альдостероновой системы (РААС) и увеличивает выделение АТ-II, который возбуждает рецепторы к АТ-I и запускает сигнальные каскады, в конечном итоге ведущие к эпителиально-мезенхимальной трансдифференциации, апоптозу подоцитов и профибротическому перерождению мезангиальных клеток [52]. АТ-II изменяет сборку белка щелевой диафрагмы подоцитов, таким образом регулируя объем клубочковой фильтрации. В мезангиальных клетках клубочков АТ-II запускает сигнальные пути, вызывающие избыточную аккумуляцию мезангиального матрикса. Вместе с тем высокие концентрации АТ-II активирют сигнальные пути, ведущие к апоптозу и потере подоцитов в структуре гломерулярного фильтра [53]. Кроме того, подоциты экспрессируют минералокортикоидные рецепторы, необходимые для связи еще с одним компонентом РААС – альдостероном. АТ-II стимулирует синтез провоспалительных медиаторов, включая адгезивные молекулы и хемокины, которые могут модулировать некоторые ответы иммунных и воспалительных клеток, в частности хемотаксис, пролиферацию и дифференциацию моноцитов в макрофаги [54]. Отложения иммунных комплексов в клубочках запускают активацию системы комплемента и гиперпродукцию ряда белков базальной мембраны, включая коллаген IV типа и ламинин. В настоящее время нефротический синдром рассматривается как подоцитопатия, а снижение числа подоцитов приводит к патологии клубочков [55, 56]. Как уже упоминалось, при мГЛН отмечается снижение числа и сглаживание ножек подоцитов, последнее считается наиболее ранним признаком повреждения подоцитов. Потере подоцитов способствует также активация механизмов эпителиально-мезенхимальной трансдифференциации. Молекулярно-клеточные аспекты подоцитарного повреждение детально изложены в публикации И.Н. Бобковой и соавт. [30, 31].

Клинико-прогностическое значение PLA2R и THSD7A при мГЛН

Рассматривая проблему мГЛН, следует отметить роль PLA2R как трансмембранного гликопротеина, экспрессируемого на подоцитах. По современным данным, мГЛН протекает с образованием иммунных комплексов in situ, в состав которых входят главным образом антитела класса IgG4 к PLA2R [2, 57, 58]. Формирующиеся при этом иммунные комплексы откладываются под базальной мембраной субэпителиально и запускают активацию комплемента, а также гиперпродукцию некоторых белков базальной мембраны, включая коллаген IV типа и ламинин. Эти изменения приводят к перестройке базальной мембраны и нарушению ее функций [59], что сопровождается появлением протеинурии. Нужно отметить, что при первичном мГЛН часто обнаруживается антитела к PLA2R как в системном кровотоке, так и в составе иммунных комплексов у большинства взрослых пациентов [60]. Как отмечено в клинических рекомендациях, у 70–80% пациентов с мГЛН выявляются антитела к PLA2R, преимущественно иммуноглобулина класса G4 [6, 27]. Тогда как у 20–30% пациентов с первичным мГЛН внутренние антигены клубочков и аутоантитела к ним не идентифицированы. Наличие циркулирующих антител к PLA2R тесно связано с выраженностью клинических проявлений заболевания [59, 61]. При первичном мГЛН обнаружено снижение и/или исчезновение титра антител против PLA2R в сыворотке крови, а рецидив болезни ассоциируется с появлением/нарастанием уровня этих антител в системном кровотоке [1]. У пациентов с положительными антителами отслеживание уровня анти-PLA2R в динамике позволяет прогнозировать риск прогрессирования заболевания и вероятность ремиссии. Есть основания полагать, что у пациентов с мГЛН при наличии анти-PLA2R в крови может отмечаться резистентность к проводимой терапии [62]. Как упоминалось выше, циркулирующие в сыворотке крови анти-PLA2R-антитела часто выявляются у пациентов с первичным мГЛН [6, 27]. Ранее считалось, что у пациентов с вторичным мГЛН анти-PLA2R-антитела не обнаруживаются. Это позволило предложить использование определения этих антител в сыворотке для дифференциальной диагностики первичной и вторичной форм мГЛН. Однако имеются свидетельства о наличии анти-PLA2R-антител в крови при мГЛН у лиц с ВИЧ-инфекцией и вирусами гепатита В и С [63]. К тому же у пациентов с мГЛН, ассоциированной с инфекционными заболеваниями и наличием анти-PLA2R-антител, величина протеинурии и соотношение белок/креатинин в моче были достоверно выше [63]. Отдельно следует отметить результаты исследования W. Qin et al., где у 3 из 10 пациентов с мГЛН, связанного с сόлидной опухолью, выявлялось наличие анти-PLA2R1-антител [64].

Морфологические проявления, свойственные мГЛН, можно заметить с помощью электронной микроскопии, и касаются они субэпителиальных, субэндотелиальных и интрамембранозных отложений депозитов иммунных комплексов (рис. 4). В ранее опубликованном исследовании был описан случай саркоидоза и мГЛН, ассоциированного с наличием анти-PLA2R, в связи с чем было высказано предположение о возможности общего патофизиологического процесса при первичном и вторичном мГЛН [65]. Хотя циркулирующие иммунные комплексы и гипергаммаглобулинемия являются обычной находкой у пациентов с саркоидозом [66].

71-1.jpg (323 KB)

Недавнее когортное ретроспективное исследования показало, что PLA2R, домен тромбоспондина 1-го типа, содержащий 7А (THSD7A), экзостозин-1 и -2 (EXT 1/EXT 2) и протеинкиназный C-связывающий белок (NELL-1), были идентифицированы как потенциальные антигены подоцитов при мГЛН [67]. Как сообщают авторы, среди 177 лиц с мГЛН диагноз PLA2R-положительный (PLA2R+), THSD7A+ и отрицательный (PLA2R-/THSD7A-) случай заболевания был установлен у 117 (66,1%), 6 (3,4%) и 54 (30,5%) пациентов соответственно.

В указанных подгруппах темпы развития почечной недостаточности были одинаковыми. Заслуживает внимания тот факт, что лица с мГЛН и наличием THSD7A+ имели более высокую частоту наличия (50%) или повышенный риск развития онкологической патологии во время наблюдения (отношение рисков=5,0; 95% доверительный интервал – 1,4–17,9; р=0,01). В указанном исследовании большинство пациентов с мГЛН и имеющих экзостозин-1 и -2 были женского пола. Вместе с тем у них выявлялись отложения C1q в клубочках [67]. Рецепторы экзостозин-1 и -2, а также протеинкиназный C-связывающий белок при мГЛН встречаются не так часто. В ряде исследований подчеркнута роль антител против NELL-1 и EXT1/EXT2 при мГЛН [68]. Сведения о внутриклеточных механизмах с участием NELL-1, лежащих в основе структурной перестройки подоцитов, пока достаточно ограничены. Многими исследователями признается, что мГЛН как наиболее частое заболевание клубочков связано со злокачественными новообразованиями [69], особенно у лиц старших возрастных групп. Ранее сообщалось, что рецептор PLA2R является аутоантигеном, участвующим в развитии первичного мГЛН, тогда как THSD7A может иметь тесную связь с мГЛН, связанного со злокачественными ново-образованиями [69]. У лиц с вторичным мГЛН, ассоциированным со злокачественными новообразованиями, частота выявления антител к PLA2R достигает 30%. Злокачественные новообразования могут служить причиной развития мГЛН в 20% случаев у пациентов пожилого возраста, у людей молодого и среднего возраста – в 4%. К настоящему времени установлено, что старший возраст, гипертриглицеридемия и протеинурия служат независимым фактором ускорения тубулоинтерстициального фиброза при мГЛН [70].

Мета-анализ, выполненный S.J. Rao et al., был направлен на изучение взаимосвязи между анти-PLA2R и клиническими характеристиками, а также неблагоприятными исходами первичного мГЛН. Мета-анализ охватил 20 исследований с участием 2224 пациентов с первичным мГЛН. Установлено, что имеется тесная корреляция между уровнем сывороточного анти-PLA2R и возрастом, концентрацией общего холестерина и альбумина крови [71]. Очевидно, что повышенные уровни сывороточного анти-PLA2R при мГЛН свидетельствуют об активности патологического процесса в почках. В указанном мета-анализе также продемонстрирована обратная связь между содержанием анти-PLA2R в сыворотке крови и величиной расчетной скорости клубочковой фильтрации [71]. Следует отметить, что показатель анти-PLA2R исследуется не только в системном кровотоке, но и локально в ткани почек. Так, в одноцентровом исследовании были изучены отложения PLA2R и THSD7A в клубочках и их циркулирующие антитела при мГЛН [69]. В этом исследовании 12 пациентов с мГЛН и наличием злокачественных новообразований и 257 пациентов с идиопатическим мГЛН были без злокачественного новообразования. Оценка экспрессии PLA2R, THSD7A и IgG4 в клубочках анализировалась с помощью иммуногистохимического метода. Циркулирующие антитела против PLA2R и THSD7A исследовались с помощью иммуноферментного анализа и непрямого иммунофлуоресцентного тестирования соответственно. Важно отметить, что в этом исследовании лица с мГЛН и онкологическими заболеваниями были значительно старше, имели более высокий уровень креатинина в сыворотке крови и более низкую расчетную скорость клубочковой фильтрации, чем пациенты с идиопатическим мГЛН (р<0,05). Авторы установили, что отложения PLA2R и IgG4 в клубочках и уровень циркулирующих антител против PLA2R у лиц с злокачественными новообразованиями и мГЛН были значительно ниже, чем у пациентов с идиопатическим мГЛН (р<0,01) [69]. При изучении клинического и прогностического значения PLA2R и THSD7A у больных мГЛН обнаружено присутствие анти-THSD7A-антител, связанное с повышенным риском малигнизации [72, 73]. В недавно проведенном исследовании оценивалась экспрессия THSD7A у 101 пациента со злокачественными новообразованиями (колоректальный рак у 81 и у 20 – рак груди). Было показано, что положительные уровни экспрессии THSD7A в двух типах опухолевых тканей были очень высокими: 97,5% при колоректальном раке и 100% при раке груди. Стоит отметить, что в данном исследовании у 11 (10,9%) пациентов до операции была протеинурия, у троих больных исчезнувшая после оперативных вмешательств [74]. В обзорной статье С.А. Кузнецовой, А.В. Крылова и Е.П. Киселевой отмечено, что тромбоспондин-1 является гликопротеином, состоящим из множества структурных доменов, которые взаимодействуют с широким спектром рецепторов на поверхности клеток или другими лигандами, что в свою очередь определяет многофункциональность этой молекулы. В частности, тромбоспондин-1 участвует в регуляции адгезии, миграции, пролиферации и выживаемости различных типов клеток [75]. Многие клетки организма секретируют тромбоспондин-1, и его экспрессия значительно выражена в местах тканевого повреждения и восстановления (репарации). Не менее важно отметить, что секреция тромбоспондина-1 индуцируется провоспалительными цитокинами и опухолевыми антигенами. Кроме того, высокие уровни тромбоспондина-1 усиливают экспрессию VCAM-1 (Vascular cell adhesion molecule 1) и ICAM-1 (Intercellular Adhesion Molecule 1), что в свою очередь приводит к усилению адгезии моноцитов к эндотелиальным клеткам [76]. Оказывая влияние на подоциты, повышенные уровни тромбоспондина-1 стимулируют синтез АТ-II, тем самым поддерживают воспаление в клубочках. Двунаправленная связь между уровнем тромбоспондина-1 и продукцией АТ-II при мГЛН продолжает изучаться. В ряде случаев у пациентов с мГЛН обнаруживаются антиподоцитарные антитела типа C5b-9 (мембраноатакующего комплекса) и их субэпителиальная депозиция. При взаимодействии иммунных комплексов активируется ряд ферментативных систем подоцитов, что приводит к их повреждению. Этим объясняется участие подоцитов в развитии и прогрессировании иммуновоспалительных процессов. Медиаторы повреждения подоцитов при мГЛН существенно не отличаются от нефропатии другой этиологии. Так, повышенный синтез ангиопоэтинподобного белка-4 (ANGPTL4, angiopoietin-related protein 4) подоцитарными клетками сопровождается возникновением протеинурии в результате изменения ножек подоцитов [77]. В дальнейшем тяжесть подоцитарной дисфункции определяется степенью секреции трансформирующего фактора роста-β1, который стимулирует синтез подоцитами коллагена IV типа, способствуя утолщению базальной мембраны клубочков и развитию гломерулосклероза. Кроме того, трансформирующий фактор роста-β1 стимулирует экспрессию в подоцитах эндотелиального фактора роста сосудов [78]. В ранее проведенных исследованиях установлено, что эндотелиальный фактор роста сосудов подавляет образование нефрина в подоцитах, таким образом способствуя нарушению функции ножковых отростков [79]. Наоборот, снижение уровня эндотелиального фактора роста сосудов ослабляет выживаемость подоцитов, ускоряя развитие подоцитопении. Безусловно, что повышенный синтез эндотелиального фактора роста сосудов подоцитами сопровождается протеинурией, с одной стороны, и изменением архитектоники базальной мембраны клубочков, с другой.

Как указано в публикации В.А. Добронравова и соавт., основой формирования иммунных комплексов при мГЛН является образование антител класса IgG к внутренним антигенам клубочка [80]. Иммунные комплексы содержат фракции комплемента С3, С5, С6, С7, С8 и С9. Образовавшиеся антитела проникают через клубочковый барьер, связываются с антигеном – мембранным белком подоцитов мегалином [81, 82]. В результате образуются антитела к мегалину, связываются с ним, активируется система комплемента и формируются субэпителиальные иммунные комплексы in situ. Это приводит к иммунному повреждению подоцитов с расплавлением ножек подоцитов, разрушением щелевых диафрагм и протеинурии. При отложении у больных мГЛН IgG-1 и -2 заболевание ассоциируется со злокачественными новообразованиями. В таких случаях необходимо провести онкологический поиск, особенно у лиц, которые за последнее время похудели, при необъяснимой анемии или обнаружении крови в стуле, особенно у пациентов старшего возраста. Онкологический поиск бессимптомного рака преследует цели возрастного скрининга (колоноскопия для лиц старше 50 лет, маммография для женщин старше 40 лет, определение простатического специфического антигена для мужчин более 50 лет или более 40 лет, для представителей негроидной расы, рентгенологическое исследование и по возможности компьютерная томография грудной клетки для пациентов с факторами риска рака легких) [6, 27].

Как отмечено выше, при вторичных формах мГЛН лечение основной патологии может способствовать быстрой ремиссии болезни. Не так давно J. Sardhara et al. описали случай возникновения нефротического синдрома у 60-летней женщины, страдавшей менингиомой, когда после удаления опухоли была отмечена ремиссия нефротического синдрома, что подтверждает этиологическую роль опухоли [83]. В этом исследовании нефробиопсия продемонстрировала картину, характерную для мГЛН: утолщение базальной мембраны клубочков и эпимембранозные аргирофильные шипики (рис. 5). Некоторые гистологические характеристики, полученные с помощью иммунофлуоресценции и электронной микроскопии при мГЛН, могут помочь отдифференциировать первичные и вторичные формы заболевания. Суть иммунофлуоресцентного метода – это выявление антигенов за счет специфических антител, образующих с ними связи, имеющие флуоресцентные маркеры.

73-1.jpg (201 KB)

Присутствие подтипов IgG1 и G2 более выражено в почках пациентов с вторичным мГЛН, чем у пациентов с первичным мГЛН. При мГЛН, вызванном злокачественными новообразованиями, гиперпродукция провоспалительных цитокинов связана с опухолевыми антигенами. В международных рекомендациях [27] указывается, что обнаружение мезангиальных депозитов при электронной микроскопии, а также распространенных депозитов IgG1, G2, и/или G3 при иммунофлуоресценции свидетельствует о существовании вторичной формы мГЛН. При первичном контакте иммунокомпетентных клеток с вирусами, простейшими и другими возбудителями различных заболеваний, а также чужеродными антигенами происходит инициация синтеза специфических иммуноглобулинов класса М. Далее под влиянием Т-лимфоцитов и цитокинов В-лимфоциты переключаются на синтез иммуноглобулинов класса G, которые являются основным фактором гуморального звена иммунной защиты. Как указано в исследовании В.И. Офицерова, к наиболее важным эффекторным механизмам действия IgG относятся активация системы комплемента, а также связывание с нейтрофилами, макрофагами, мононуклеарными фагоцитами и другими специализированными клетками иммунной системы, осуществляющими после такого взаимодействия фагоцитоз чужеродных агентов или уничтожение зараженных клеток организма за счет зависимой от антител цитотоксичности [84]. В сыворотке крови человека относительная концентрация подклассов IgG снижается в следующем ряду: IgG1 (70%)>IgG2 (20%)>IgG3 (6%)>IgG4 (4%). Нужно подчеркнуть, что при первичной форме мГЛН среди иммунных депозитов доминируют субклассы IgG4 [85]. Антитела активируют комплемент по классическому пути, который начинается с взаимодействия первого компонента каскада реакций С1q с комплексом антиген–антитело, а конкретно – с СН2-доменом Fc-фрагмента молекулы IgG.

S. Baslo et al. описали случай ассоциации хронической воспалительной демиелинизирующей полирадикулоневропатии с мГЛН у 68-летнего мужчины, страдавшего артериальной гипертензией, гиперлипидемией и хронической обструктивной болезнью легких [86]. По поводу лечения неврологических расстройств (метилпреднизолон в виде пульс-терапии и таблетированные формы) у пациента развились протеинурия и отеки на конечностях. Антитела к PLA2R в сыворотке крови не были обнаружены. Нефробиопсия показала картину первой стадии мГЛН с отложениями IgG [86]. В другом исследовании у 73-летнего мужчины с тромбоцитопенией, гемолитической анемией, церебральными нарушениями и острым повреждением почек по результатам нефробиопсии подтвердился мГЛН [87]. Кроме того, обнаружено наличие антител против PLA2R. Лечение глюкокортикоидами и сеансами плазмафереза тромбоцитопенической пурпуры привело к ремиссии мГЛН. Нужно сказать, в этом наблюдении снижение активности мГЛН предшествовало исчезновению антител к PLA2R. Хотя связь хронической воспалительной демиелинизирующей полирадикулоневропатии и мГЛН впервые была описана A.S. Witte и J.F. Burke в 1987 г. [88].

Рассматривая роль лекарственных препаратов в развитии вторичного мГЛН, отметим случай его развития на фоне приема Д-пеницилламина 24-летней девушкой [89]. Анализ данных нефробиопсии показал изменение структуры базальной мемб­раны клубочков и наличие при иммунофлуоресцентном иссле­довании трех клубочков с IgG3+ и C3 c 2+ в стенках капил­ляров.

В данном наблюдении в сыворотке крови и при иммунофлуо-ресцентном исследовании анти-PLA2R не были обнаружены [89]. По литературным данным, вторичный мГЛН, выз­ванный Д-пеницилламином, возникает в любом возрасте и обычно развивается в течение 6–12 месяцев либо в 3–4 год от начала терапии [90].

Заключение

Таким образом, этиопатогенетические механизмы мГЛН до конца не изучены, низкая частота вторичного мГЛН обусловлена гиподиагностикой и недостаточным внедрением нефробиопсии. Наиболее изученными биомаркерами мГЛН являются анти-PLA2R и THSD7A. Вторичный мГЛН, возникающий у лиц старших возрастных групп, наиболее часто встречается в практической работе терапевта, однако сложная палитра этиологии этого заболевания требует полидисциплинарного подхода к предупреждению потери почечной функции в будущем.


Литература



  1. Бобкова И.Н., Камышова Е.С. Современный взгляд на лечение мембранозной нефропатии. Тер. архив. 2020;92(6):99–104. https://dx.doi.org/10.26442/00403660.2020.06.000676 

  2. Добронравов В.А., Майер Д.А., Бережная О.В. и др. Мембранозная нефропатия в российской популяции. Тер. архив. 2017;6(89):21–9. https://dx.doi.org/10.17116/terarkh201789621-29 

  3. Столяревич Е.С., Жилинская Т.Р., Варясин В.В. Морфологическая структура почечной патологии по данным пункционной биопсии почки. Клин. нефрология.2020;2:31–6. https://dx.doi.org/10.18565/nephrology.2020.2.31-36 

  4. Cai Q., Hendricks A.R. Membranous nephropathy: A ten-year journey of discoveries.Seminars in Diagnostic Pathology. WB Saunders. 2020;37:3:116–20. https://doi.org/10.1053/j.semdp.2020.01.001.

  5. Муркамилов И.Т., Сабиров И.С., Фомин В.В. и др. Мембранозный гломерулонефрит: современный взгляд на проблему и возможности терапии. Клин. нефрология.2020;1:53–60. https://dx.doi.org/10.18565/nephrology.2020.1.53-60 

  6. Бобкова И.Н., Козловская Л.В., Цыгин А.Н., Шилов Е.М. Клинические рекомендации по диагностике и лечению мембранозной нефропатии. Нефрология. 2014;18(4):93–100. 

  7. Бобкова И.Н., Кахсуруева П.А., Ставровская Е.В., Филатова Е.Е. Эволюция в понимании патогенеза идиопатической мембранозной нефропатии: от экспериментальных моделей к клинике. Альманах клинической медицины. 2017;45(7):553–64. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2017-45-7-553-564. 

  8. Батюшин М.М., Броновицкая Н.А., Синельник Е.А. и др. Опыт успешного применения ритуксимаба при резистентной к терапии мембранозной нефропатии. Южно-Российский журнал терапевтической практики. 2020;1(3):91–4. https://doi.org/10.21886/2712-8156-2020-1-3-91-94 

  9. Тареева И.Е., Мухин Н.А., Шилов Е.М. Диагностика и лечение болезней почек. М., 2006. 

  10. Rihova Z.., Honsova E, Merta M., et al. Secondary membranous nephropathy – one center experience. Renal. Failure. 2005;27:4:397–402. https://doi.org/10.1081/JDI-65304.

  11. Lefaucheur C., Stengel B., Nochy D., et al. GN-PROGRESS study group membranous nephropathy and cancer: epidemiologic evidence and determinants of high-risk cancer association. Kidney Int. 2006;70:1510–17. https://doi.org/10.1038/sj.ki.5001790.

  12. Бобылева И.А., КахсуруеваП.А., Камышова Е.С. и др. Изучение ассоциации вариантов гена рецептора фосфолипазы А2 М-типа (PLA2R1) с предрасположенностью к развитию идиопатической мембранозной нефропатии. Клин. фармакол. терапия. 2019;28(3):29–33. https://doi.org/10.32756/0869-5490-2019-3-29-33. 

  13. Сиповский В.Г., Лебедев К.И. Структура первичных гломерулопатий среди взрослого населения Северо-Западного федерального округа России. Тихоокеанский медицинский журнал. 2016;61(4):35–7. https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2016.4.35-37. 

  14. Стелье Т., Джоли Д., Ванилл Ф. и др. Клинико-патологическое многоцентровое исследование гломерулопатий, ассоциированных с саркоидозом. Нефрология. 2014;18(1):14–24. 

  15. Berliner A.R., Haas M., Choi M.J. Sarcoidosis: the nephrologist’s perspective. Am J Kidney Dis. 2006;48(5):856–70. https://doi.org/10.1053/j.ajkd.2006.07.022.

  16. Жигалов С.А., Марасаев В.В., Бажина О.В., Загородникова Н.В. Гломерулярные поражения почек при ревматоидном артрите. Клин. нефрология. 2013;6:42–5. 

  17. Helin H.J., Korpela M.M., Mustonen J.T., Pasternack A.I. Renal biopsy findings and clinicopathologic correlations in rheumatoid arthritis. Arthritis & Rheumatism: Off. J. Am. Coll. Rheumatol. 1995;38:2:242–47. https://doi.org/10.1002/art.1780380213.

  18. Nakano M., Ueno M., Nishi S., et al. Analysis of renal pathology and drug history in 158 Japanese patients with rheumatoid arthritis.Clin. Nephrol. 1998;50:3:154–60.

  19. Yoshida A., Morozumi K., Suganuma T., et al. Clinicopathological study of nephropathy in patients with rheumatoid arthritis. Ryumachi. 

  20. Meyer-Schwesinger C., Tomas N.M., Dehde S., et al. A novel mouse model of phospholipase A2 receptor 1-associated membranous nephropathy mimics podocyte injury in patients. Kidney Int. 2020;97:5:913–19. https://doi.org/10.1016/j.kint.2019.10.022.

  21. Cai Q., Hendricks A.R. Membranous nephropathy: A ten-year journey of discoveries Seminars in Diagnostic Pathology. WB Saunders. 2020;37:3:116–20. https://doi.org/10.1053/j.semdp.2020.01.001.

  22. Fujioka H., Koike T., Imamura T., et al. Mucoepidermoid carcinoma of parotid gland and membranous nephropathy–differentiation between sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia and Kimura’s disease. BMC. Nephrol. 2020;21(1):1–5. https://doi.org/10.1186/s12882-020-02030-1

  23. Okamoto M., Kitamura M., Sato S., et al. Life prognosis and renal relapse after induction therapy in Japanese patients with proliferative and pure membranous lupus nephritis. Rheumatol. 2020. https://doi.org/10.1093/rheumatology/keaa599

  24. Wang Q., Ruiz J.P., Hart P.D. Case report: a man with untreated rheumatoid arthritis, cryoglobulinemic vasculitis, membranous nephropathy and pulmonary sarcoidosis. BMC. Nephrol. 2020;21(1):1–8. https://doi.org/10.1186/s12882-020-02161-5

  25. Kimoto M., Fukunaga N., Yamaguchi N., et al. A case of denosumab-associated membranous nephropathy in a patient with rheumatoid arthritis. CEN Case Reports. 2020;9(1):1–5. https://doi.org/10.1007/s13730-019-00414-3

  26. Nikolopoulou A., Teixeira C., Cook H.T., et al. Membranous nephropathy associated with viral infection. Clin. Kidney J. 2020. https://doi.org/10.1093/ckj/sfaa026

  27. Cattran D.C., Feehally J., Cook H.T., et al. Kidney disease: improving global outcomes (KDIGO) glomerulonephritis work group. KDIGO clinical practice guideline for glomerulonephritis. Kidney Int. Suppl. 2012;2(2):139–274. https://doi.org/10.1038/kisup.2012.9

  28. Мершер С., Форнони А. Патология подоцитов и нефропатия – роль сфинголипидов в гломерулярных болезнях. Нефрология. 2016;20(1):10–23. 

  29. Шамитова Е.Н., Романов В.О. Подоцитарные маркеры в моче.Успехи современной науки и образования. 2016;11(6):107–10. 

  30. Бобкова И.Н., Шестакова М.В., Щукина А.А. Диабетическая нефропатия – фокус на повреждение подоцитов. Нефрология. 2015;19(2):33–44. 

  31. Бобкова И.Н., Щукина А.А., Шестакова М.В. Оценка уровней нефрина и подоцина в моче у больных сахарным диабетом. Нефрология. 2017;21(2):33–40. https://doi.org/10.24884/1561-6274-2017-21-2-33-40. 

  32. Pisarek-Horowitz A., Fan X., Kumar S., et al. Loss of Roundabout Guidance Receptor 2 (Robo2) in Podocytes Protects Adult Mice from Glomerular Injury by Maintaining Podocyte Foot Process Structure. Am. J. Pathol. 2020;190:4:799–816. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2019.12.009

  33. Faul C., Asanuma K., Yanagida-Asanuma E., et al. Actin up: regulation of podocyte structure and function by components of the actin cytoskeleton. Trends Cell Biol. 2007;17:9:428–37. https://doi.org/10.1016/j.tcb.2007.06.006

  34. Tsuji K, Kitamura S, Wada J. MicroRNAs as Biomarkers for Nephrotic Syndrome. Int. J. Mol. Sci. 2021;22(1):88. https://doi.org/10.3390/ijms22010088

  35. Hoxha E., Stah R.A.K., Reinhard L., et al. A new chemiluminescence immunoassay for phospholipase A2 receptor 1 autoantibodies allows early identification of autoantibody recurrence in patients with membranous nephropathy. Kidney Int. Reports. 2021. https://doi.org/10.1016/j.ekir.2020.12.034

  36. Dustin M.L., Olszowy M.W., Holdorf A.D., et al. A novel adaptor protein orchestrates receptor patterning and cytoskeletal polarity in T-cell contacts. Cell. 1998;94(5):667–77. https://doi.org/10.1016/S0092-8674(00)81608-6.

  37. Schiffer M., Mundel .P, Shaw A.S., et al. A novel role for the adaptor molecule CD2 -associated protein in transforming growth factorβ-induced apoptosis. J. Biol. Chem. 2004;279(35):37004-12.

  38. Случанко Н.Н., Гусев Н.Б. Белки семейства 14-3-3 и регуляция цитоскелета.Успехи биологической химии. 2010;50:69–116. 

  39. Часовских Н.Ю., Рязанцева Н.В., Кайгородова Е.В. и др. Состояние системы МАР-КинАЗ JNK и р38 в мононуклеарных лейкоцитах крови при воспалении. Мед. иммунология. 2009;11(6):515–22. 

  40. Yokota R., Bhunu B., Toba H., Intapad S. Sphingolipids and kidney disease: Possible role of preeclampsia and intrauterine growth restriction (IUGR). Kidney 360. 2021. Doi: https://doi.org/10.34067/KID.0006322020.

  41. Мершер С., Форнони А. Патология подоцитов и нефропатия – роль сфинголипидов в гломерулярных болезнях. Нефрология. 2016;20(1):10–23. 

  42. Savostyanov K., Pushkov A., Zhurkova N., et al. Selective screening for nephropathic cystinosis among high-risk contingents of the children population in Russia. Mol. Genet. Metab. 2020;129(2):S144.

  43. Савостьянов К.В. Оптимизация молекулярной диагностики редких наследственных болезней у российских пациентов. Дисс. докт. биол. наук. М., 2020. 

  44. Сиповский В.Г., Неворотин А.И., Авсиевич И.В., Смирнов А.В. Ультраструктурное исследование альтерации подоцитов при непролиферативных гломерулопатиях. Архив патологии. 2019;81(3):51–8. https://doi.org/10.17116/patol20198103151. 

  45. Cara-Fuentes G., Smoyer W.E. Biomarkers in pediatric glomerulonephritis and nephrotic syndrome. Pediatr. Nephrol. 2021. С.1–15. https://doi.org/10.1007/s00467-020-04867-y.

  46. Fischer E., Mougenot B., Callard P., et al. Abnormal expression of glomerular basement membrane laminins in membranous glomerulonephritis. Nephr. Dyal. Transp. 2000;15(12):1956–64. https://doi.org/10.1093/ndt/15.12.1956

  47. Батюшин М.М., Пасечник Д.Г. Ламинины в структуре гломерулярной базальной мембраны. Нефрология. 2016;20(5):9–15. 

  48. Raychowdhury R., Zheng G., Brown D., McCluskey R.T. Induction of Heymann nephritis with a gp330/megalin fusion protein. Am. J. Pathol. 1996;148:1613–23.

  49. Петросян Э.К., Паунова С.С., Длин В.В., Шумилов П.В. Проект современной классификации гломерулонефрита у детей. Педиатрия. 2015;94(3):188–95. 

  50. Игнатова М.С., Длин В.В. Нефротический синдром: прошлое, настоящее и будущее. Рос. вестн. перинатологии и педиатрии. 2017;62:(6):29–44. https://doi.org/10.21508/1027–4065–2017–62–6–29–44. 

  51. Moroni G., Ponticelli C. Secondary Membranous Nephropathy. A Narrative Review. Front. Med. 2020;7:928. https://doi.org/10.3389/fmed.2020.611317.

  52. Кузьмин О.Б., Жежа В.В., Белянин В.В., Ландарь Л.Н. Гломерулярная гипертензия: молекулярные механизмы повреждения подоцитов и мезангиальных клеток. Нефрология. 2016;20(4):31–9. https://doi.org/10.24884/1561-6274-2016-20-4-46-50. 

  53. Cardoso V.G., Gonçalves G.L., Costa-Pessoa J.M., et al. Angiotensin II-induced podocyte apoptosis is mediated by endoplasmic reticulum stress/PKC-δ/p38 MAPK pathway activation and trough increased Na+/H+ exchanger isoform 1 activity. BMC. Nephrol. 2018;19(1):1–12. https://doi.org/10.1186/s12882-018-0968-4.

  54. Ruiz-Ortega M., Lorenzo O., Suzuki Y., et al. Proinflammatory actions of angiotensins. Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2001;10(3):321–29.

  55. Ozeki T., Nagata M., Katsuno T., et al. Nephrotic syndrome with focal segmental glomerular lesions unclassified by Columbia classification; Pathology and clinical implication. Plos one. 2021;16(1):e0244677. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0244677.

  56. Yang W.Y., Chen L.C., Jhuang Y.T., et al. Injection of Hybrid 3D Spheroids Composed of Podocytes, Mesenchymal Stem Cells, and Vascular Endothelial Cells into the Renal Cortex Improves Kidney Function and Replenishes Glomerular Podocytes. Bioengineer. Translat. Med. 2021:e10212. https://doi.org/10.1002/btm2.10212.

  57. Lwezaula B.F., Ameh O.I., Ekrikpo U.E., et al. Diagnostic performance of glomerular PLA2R and THSD7A antibodies in biopsy confirmed primary membranous nephropathy in South Africans. BMC. Nephrol. 2021;22(1):1–8. https://doi.org/10.1186/s12882-020-02216-7.

  58. Padmavathi K., Senthılkumar A.V., Dutta A. Hybrid Feature Selection Method for Predicting the Kidney Disease Membranous Nephropathy. Innovations in Computational Intelligence and Computer Vision. Springer, Singapore. 2021:472–8. https://doi.org/10.1007/978-981-15-6067-5_53.

  59. Джумабаева Б.Т., Бирюкова Л.С. Новые аспекты патофизиологии и патоморфологии поражений почек при злокачественных опухолях. Клин. онкогематология. 2015;8(4):390–6. 

  60. Debiec H., Ronco P. PLA2R autoantibodies and PLA2R glomerular deposits in membranous nephropathy. N. Engl. J. Med. 2011;364(7):689–90.

  61. Бобылева И.А., Кахсуруева П.А., Камышова Е.С. и др. Клинико-генетические особенности идиопатической мембранозной нефропатии у российских пациентов. Клин. нефрология. 2019;3(11):31–6. https://doi.org/10.18565/nephrology.2019.3.31-36. 

  62. Maifata S.M.A., Hod R., Zakaria F., Ghani F.A. Role of Serum and Urine Biomarkers (PLA2R and THSD7A) in Diagnosis, Monitoring and Prognostication of Primary Membranous Glomerulonephritis. Biomolecul. 2020;10(2):319. https://doi.org/10.3390/biom10020319.

  63. Nikolopoulou A., Teixeira C., Cook H.T., et al. Membranous nephropathy associated with viral infection..Clin. Kidney J. 2020;14(3):876–83. https://doi.org/10.1093/ckj/sfaa026

  64. Qin W., Beck LHJr., Zeng C., et al. Anti-phospholipase A2 receptor antibody in membranous nephropathy. J. Am. Soc. Nephrol. 2011;22(6):1137–43. https://doi.org/10.1681/ASN.2010090967

  65. Knehtl M., Debiec H., Kamgang P., et al. A case of phospholipase A(2) receptor-positive membranous nephropathy preceding sarcoid-associated granulomatous tubulointerstitial nephritis. Am. J. Kidney Dis. 2011;57(1):140–43. https://doi.org/10.1053/j.ajkd.2010.09.015

  66. Scadding J.G. Prognosis of intrathoracic sarcoidosis in England. A review of 136 cases after five years’ observation. Br. Med. J. 1961;2(5261):1165–72. https://doi.org/10.1136/bmj.2.5261.1165

  67. Hanset N., Aydin S., Demoulin N., et al. Podocyte antigen staining to identify distinct phenotypes and outcomes in membranous nephropathy: a retrospective multicenter cohort study. Am. J. Kidney Dis. 2020;76(5):624–35. https://doi.org/10.1053/j.ajkd.2020.04.013

  68. Sethi S., Debiec H., Madden B., et al. Neural epidermal growth factor-like 1 protein (NELL-1) associated membranous nephropathy. Kidney Int. 2020;97(1):163–74. https://doi.org/10.1016/j.kint.2019.09.014

  69. Zhang D., Zhang C., Bian F., et al. Clinicopathological features in membranous nephropathy with cancer: A retrospective single-center study and literature review.The Int. J. Biol. Markers. 2019;34(4):406–13. https://doi.org/10.1177/1724600819882698

  70. Lou Y., Gao D., Guo Q., et al. Changes in Clinicopathological Characteristics of Patients with Idiopathic Membranous Nephropathy: A Single-Center Retrospective Study. Iranian Red Crescent Med. J. 2020;22(5):e97452. http://dx.doi.org/10.5812/ircmj.97452

  71. Rao S.J., Shen Q., Wang H.M., et al. The association of anti-PLA2R with clinical manifestations and outcomes in idiopathic membranous nephropathy: a meta-analysis. Int. Urol. Nephrol. 2020;52(11):2123–33. https://doi.org/10.1007/s11255-020-02588-7.

  72. Couser W.G. The pathogenesis of human membranous nephropathy: we are (almost) there. Kidney Int. 2020;97(5):849–52. https://doi.org/10.1016/j.kint.2020.01.037.

  73. Pozdzik A., Brochériou I., David C., et al. Membranous Nephropathy and Anti-Podocytes Antibodies: Implications for the Diagnostic Workup and Disease Management. Biomed Res. Int. 2018;2018:6281054. https://doi.org/10.1155/2018/6281054.

  74. Xian L., Dong D., Luo J., et al. Expression of THSD7A in neoplasm tissues and its relationship with proteinuria. BMC. Nephrol. 2019;20(1):332. https://doi.org/10.1186/s12882-019-1489-5.

  75. Кузнецова С.А., Крылов А.В., Киселева Е.П. Иммунорегуляторные свойства тромбоспондина-1, компонента внеклеточного матрикса и ингибитора ангиогенеза. Мед. иммунология. 2008;10(6):499–506. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2008-6-499-506. 

  76. Narizhneva N.V., Razorenova O.V., Podrez E.A., et al. Thrombospondin-1 up-regulates expression of cell adhesion molecules and promotes monocyte binding to endothelium. FASEB J. 2005;19(9):1158–60. https://doi.org/10.1096/fj.04-3310fje.

  77. Ruscica M., Ruscica M., Zimetti F., et al. Pharmacological aspects of ANGPTL3 and ANGPTL4 inhibitors: New therapeutic approaches for the treatment of atherogenic dyslipidemia. Pharmacological Res. 2020;153:104653. https://doi.org/10.1016/j.phrs.2020.104653.

  78. Lai H., Chen A., Cai H., et al. Podocyte and endothelial-specific elimination of BAMBI identifies differential transforming growth factor-β pathways contributing to diabetic glomerulopathy. Kidney Int. 2020;98(3):601–14. https://doi.org/10.1016/j.kint.2020.03.036.

  79. Tufro A., Veron D. VEGF and podocytes in diabetic nephropathy. Seminars in nephrology.WB Saunders. 2012;32(4):385–93. https://doi.org/10.1016/j.semnephrol.2012.06.010.

  80. Добронравов В.А., Лапин С.В., Лазарева Н.М., и др. Циркулирующие антитела к рецептору фосфолипазы А2 при первичной мембранозной нефропатии. Нефрология. 2012;16(4):39–44. https://doi.org/10.24884/1561-6274-2012-16-4-39-44. 

  81. Detsika M.G., Lianos E.A. Regulation of Complement Activation by Heme Oxygenase-1 (HO-1) in Kidney Injury. Antioxidants. 2021;10(1):60. https://doi.org/10.3390/antiox10010060.

  82. AlYousef A., AlSahow A., AlHelal B., et al. Glomerulonephritis histopathological pattern change. BMC. Nephrol. 2020;21:1–7. https://doi.org/10.1186/s12882-020-01836-3.

  83. Sardhara J., Shukla M., Jamdar J., et al. Paraneoplastic nephrotic syndrome in a patient with planum sphenoidale meningioma. Asian J. Neurosurg. 2018;13(3):864–66. https://doi.org/10.4103/1793-5482.238080.

  84. Офицеров В.И. Подклассы иммуноглобулина G: возможности использования в диагностической практике.ЗАО Вектор-Бест: Кольцово. 2005. 25 с. 

  85. Birkeland S.A., Storm H.H. Glomerulonephritis and malignancy: A population-based analysis. Kidney Int. 2003;63(2):716–21. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.2003.00771.x.

  86. Baslo S.A., İdrisoğlu H.A., Aral O., Öge A.E. CIDP and membranous nephropathy: a case with limited electrophysiological findings and a rare association. Neurological Sci. 2020:1–5. https://doi.org/10.1007/s10072-020-04612-1.

  87. Iio R., Akiyama S.I., Mitsumoto K., et al. Thrombotic thrombocytopenic purpura developed during the conservative treatment of anti-phospholipase A 2 receptor antibody-positive idiopathic membranous nephropathy: a case report. BMC. Nephrol. 2020;21(1):1–6. https://doi.org/10.1186/s12882-020-02086-z.

  88. Witte A.S., Burke J.F. Membranous glomerulonephritis associated with chronic progressive demyelinating neuropathy. Neurol. 1987;37:342–45.

  89. Prasad N.S., Tirumavalavan S., Fernando M. D-penicillamine-induced membranous nephropathy. Indian J. Nephrol. 2014;24(3):195–96. https://doi.org/10.4103/0971-4065.132024.

  90. Larsen C.P., Messias N.C., Silva F.G., et al. Determination of primary versus secondary membranous glomerulopathy utilizing phospholipase A2 receptor staining in renal biopsies. Mod. Pathol. 2013;26(5):70915. https://doi.org/10.1038/modpathol.2012.207.


Об авторах / Для корреспонденции


Илхом Торобекович Муркамилов – к.м.н., и. о. доцента кафедры факультетской терапии КГМА им. И.К. Ахунбаева; старший преподаватель кафедры терапии № 2
по специальности «лечебное дело» ГОУ ВПО КРСУ, Бишкек, Кыргызстан; е-mail: murkamilov.i@mail.ru; ORCID: org/0000-0001-8513-9279.
Ибрагим Самижонович Сабиров – д.м.н., профессор, заведующий кафедрой терапии № 2 по специальности «лечебное дело», ГОУ ВПО КРСУ; Бишкек, Кыргызстан; е-mail: sabirov_is@mail.ru; ORCID: org/0000-0002-8387-5800.
Виктор Викторович Фомин – д.м.н., профессор, член-корр. РАН, заведующий кафедрой факультетской терапии № 1 Института клинической медицины
им. Н.В. Склифосовского, проректор по клинической работе и дополнительному профессиональному образованию ФГАОУ ВО «Первый МГМУ им. И.М. Сеченова» Минздрава РФ; Москва, Россия; е-mail: fomin_vic@mail.ru; ORCID: org/0000-0002-2682-4417.
Жамила Абдилалимовна Муркамилова – заочный аспирант кафедры терапии № 2 по специальности «лечебное дело» ГОУ ВПО КРСУ; Бишкек, Кыргызстан;
е-mail: murkamilovazh.t@mail.ru; ORCID:org/0000-0002-7653-0433.
Индира Орозобаевна Кудайбергенова – д.м.н., профессор, ректор КГМА им. И.К. Ахунбаева; Бишкек, Кыргызстан; е-mail:k_i_o2403@mail.ru;
ORCID: org/0000-0003-3007-8127.
Фуркат Абдулахатович Юсупов – д.м.н., профессор, заведующий кафедрой неврологии, нейрохирургии и психиатрии медицинского факультета ОшГУ, г
лавный невролог Южного региона Кыргызстана; Ош, Кыргызстан; е-mail: furcat_y@mail.ru; ORCID:org/0000-0003-0632-6653.


Похожие статьи


Бионика Медиа