Новые возможности консервации органов при трансплантации почки


В.А. Степанов, К.А. Коршунов, А.Г. Янковой

Отделение органного донорства ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского» (МОНИКИ)
Число больных, нуждающихся в трансплантации почки, неуклонно растет, в связи с чем увеличивается потребность в донорских органах. Обсуждаются подходы к применению аппаратной перфузии в программе трансплантации почки, а также ее клиническая и экономическая эффективность.

За последние десятилетия достигнуты значительные успехи в лечении пациентов с хронической болезнью почек (ХБП) V стадии. Доступность и возрастающая эффективность диализа способствуют увеличению продолжительности жизни таких больных, а трансплантация донорской почки значительно улучшает ее качество [1]. Число больных ХБП V стадии неуклонно растет, в связи с чем потребность в донорских органах остается постоянно высокой [2]. Для увеличения пула эффективных доноров применяются различные способы, в т.ч. использование органов от доноров с расширенными критериями. Однако риск развития осложнений у реципиентов ренального трансплантата от доноров с расширенными критериями гораздо выше, чем от доноров со стандартными критериями [3].

Помимо иммунологических факторов одним из главных препятствий для сохранения функции трансплантата является ишемическое/реперфузионное повреждение [4]. Этот процесс может активировать врожденный иммунитет (вызвать активацию каскада комплемента), что способствует появлению и прогрессированию интерстициального фиброза и тубулярной атрофии [5, 6]. Некоторые методы консервации донорского органа, способные уменьшить его ишемию (гормональная терапия, экстракорпоральные сорбционные методы у донора), трудоемки и затратны в использовании в обычной клинической практике или же находятся на стадии доклинических испытаний [7, 8].

В настоящее время наряду с простой статичной холодовой консервацией органов используют метод аппаратной перфузии (АП), хорошо зарекомендовавшей себя как один из способов уменьшения ишемических повреждений [9, 10]. Показано, что применение АП снижает частоту выявления отсроченной функции почечного трансплантата [11, 12], повышает его выживаемость [13, 14] за счет снижения частоты развития интерстициального фиброза и атрофии канальцев [15]. Использование АП стимулирует процессы, направленные на защиту эндотелия, таким образом снижая степень почечного повреждения во время реперфузии [16].

Впервые возможность метода гипотермической консервации органов продемонстрировал в эксперименте F.A. Fuhrman в 1943 г. [17]. Затем в 1960 г. J.C. Kisser et al. и A.G. Lapchinsky на животных применили методику консервации при помощи АП [18, 19]. В 1967 г. F.O. Belzer et al. сообщили о сохранности изъятой почки в течение 72 часов при использовании метода гипотермической АП [20].

К человеку метод АП при трансплантации почки был впервые применен в 1970 г. в университете города Висконсин [21]. В дальнейшем гипотермическая АП вошла в практическое здравоохранение, чему способствовали технические и методологические разработки. Сейчас АП используется в программе трансплантации не только почки, но и других органов – легких, печени и сердца [22, 23].

В основе метода АП лежат современные знания биологических процессов в органах и тканях человека. Теоретической базой для понимания процессов, которые могут влиять на результат консервации донорского органа, послужили новые сведения о внутриклеточных процессах. Для регуляции микроциркуляции, предотвращения адгезии форменных элементов крови на стенке сосудов и развития последующих реакций существуют различные механизмы, один из которых – эндотелиопротективный, реализующийся в самих эндотелиальных клетках. В клетках эндотелия имеются механосенситивные каналы (МСК), активные при ламинарном потоке крови. Активные МСК оказывают положительный эндотелиопротективный эффект с помощью различных внутриклеточных процессов [24].

В норме ламинарный поток крови в сосуде активирует МСК, вызывает инициацию двух внутриклеточных процессов. Первый реализуется с помощью активации энзимного пути мутагеноподобной киназы (МЕК-5) – внеклеточного регулятора киназы (ERC-5) [25], вызывает активацию MEF-2 (фактор, усиливающий рост миоцитов) [26], который служит в свою очередь регулятором экспрессии круппелеподобного фактора -2 (KLF-2) в ядре клетки. KLF-2 относится к семейству белков – факторов транскрипции генов. Семейство KLF представляет собой ДНК-связывающие белки, регулирующие экспрессию генов. Известно более 15 подтипов KLF, они кодируются геномом, расположенным на 19-й хромосоме. KLF состоят из ДНК-связывающего домена, состоящего из трех пар нуклеотидов (по типу «цинковые пальцы»), и функционального N-терминала. Из-за вариабельности N-терминала круппелеподобные факторы оказывают активирующее действие на экспрессию одних генов, а других подавляют [27]. Соединяясь с митохондриальной РНК, KLF-2 активирует синтез специфических белков. Связь KLF-2 и м-РНК нестабильна, регулируется с помощью энзима PI3K (фосфоинозитид-3 киназа) [28]. Это второй путь реализации активированных МСК, ведущий к снижению активности PI3K, вследствие чего связь транскрипционных белков KLF-2 с м-РНК становится устойчивой. Происходит синтез белков, которые подавляют киназные реакции, способствующие активации молекулы, состоящей из рилизинг-фактора, связанного с белком р65 (RELA).

С помощью молекулы RELA может происходить реализация одновременно более 150 генов. Активная молекула RELA образуется из молекулы предшественника NF-kB (ядерный фактор каппа легкой цепи активации В-клеток) путем фосфорилирования [29].

Известно также, что связывание ИЛ-1 и ФНО-а со своими рецепторами на клеточной стенке реализуется через киназный путь активации RELA, влияет на активацию Т-лимфоцитов и тормозит их апоптоз.

Эти процессы приводят к синтезу эффекторных белков, влияющих на приведенные ниже эндотелиопротективные процессы и медиаторы:

  • уменьшение экспрессии посредством предотвращения активации молекулы RELA на поверхности эндотелиальных клеток таких молекул, как рЗОО (Е1А) – белок, регулирующий пролиферацию и дифференцировку клеток (синдром Рубенстейна–Тейби – врожденная аномалия рЗОО приводит к развитию новообразований, лимфом) [30];
  • VCAM-1 (CD-106) – белок, отвечающий за адгезию эндотелиоцитов (участвует в генезе атеросклероза и ревматоидного артрита) [31]; SELE (CD-62e) – Е-селектин, молекула, отвечающая за эндотелиальную адгезию лейкоцитов (фактор хемотаксиса клеток) [32]; таким образом происходит предотвращение реализации механизмов местного воспаления;
  • активация выделения тромбомодулина – белка, обладающего антитромботическим эффектом;
  • увеличение активности синтазы эндогенного оксида азота, вызывающей мощный вазодилатирующий эффект;
  • увеличение активности предшественника натрий-уретического пептида «С», также обладающего вазодилатирующим эффектом;
  • подавление VGRF2 – рецепторов фактора роста сосудистого эндотелия [33].

Таким образом, сохранение потока жидкости при применении АП путем активации МСК позволяет уменьшать процессы повреждения эндотелия.

В настоящее время существует две наиболее распространенные системы для АП: «привод–давление» и «привод–поток». При применении обеих систем АП можно изменять величину давления потока, а также постоянно оценивать индекс резистентности. По некоторым данным, эффективность обеих систем значительно превосходит обычную холодовую консервацию. A.V. Codas и соавт. [34] отметили минимальную разницу в восстановлении ранней функции трансплантата при использовании обеих систем АП.

Вначале АП осуществлялась методом «привод–давление». Суть его заключается в нагнетании перфузата в контур системы посредством периодического пережатия коннекторных магистралей. При использовании этого метода принято считать, что давление в системе должно быть 45 мм рт. ст. при 60 пережатий магистралей в минуту. В последнее время чаще применяется АП методом «привод–поток», в системе контура создается поток перфузата с постоянной скоростью при давлении 30 мм рт. ст., достигаемой путем использования роликового насоса.

При сравнении двух этих принципов АП в исследованиях М. Wzola оценивались давление в системе, объем перфузата за единицу времени в органе, изменение сосудистого сопротивления и концентрации в перфузате биомаркеров, таких как ЛДГ и лактат, а также специфические биомаркеры: каспаза-3 (caspase-З), ФНО-а (a-TNF), нейтрофильный желатинассоциированный липокаин (NGAL) и почечная молекула повреждения (KIM-1) [35]. При этом значимых цифровых различий не наблюдалось. Были выявлены небольшие различия при оценке объема перфузата за единицу времени в органе. Этот показатель оказался несколько выше при применении системы, использующей «привод–поток».

Одной из главных причин повреждения нефронов является гипоксия. Находясь в состоянии гипоксии, мозговое вещество почек продуцирует лактат [36], а его метаболизм происходит в корковом слое почки [37]. При этом запускается анаэробный путь обмена с выделением лактата. Эта реакция проходит с участием фермента лактатдегидрогеназы (ЛДГ) [38]. При использовании метода АП «привод–давление» к 4-му часу проведения отмечается повышение концентрации лактата и ЛДГ в перфузате, что служит проявлением ишемии органа [39].

Были исследованы влияние различных типов АП на функцию почечного трансплантата в раннем послеоперационном периоде, вероятность развития отсроченной функции трансплантата, количество проведенных после операции сеансов гемодиализа, функция трансплантата через 12 месяцев после операции и данные результатов биопсии трансплантата в течение 12 месяцев.

При использовании АП методом «привод–поток» в раннем посттрансплантационном периоде выполнялось меньше сеансов гемодиализа (в среднем 2,65) по сравнению с методом «привод–давление» (в среднем 4,66) при одинаковой частоте развития отсроченной функции трансплантата. Отмечена более высокая выживаемость реципиентов и трансплантатов к концу первого года от доноров как с расширенными (92 и 66 %), так и со стандартными критериями (96 и 80 %).

Проведены патоморфологические исследования биоптатов почечного трансплантата по классификации Banff при нестабильной функции в течение первого года после трансплантации. При стабильной функции через 12 месяцев после трансплантации оценивались интерстициальный фиброз и тубулярная атрофия (IFTA), а также признаки отторжения трансплантата. Уже через 3 месяца после трансплантации явления IFTA наблюдались в 45 % случаев в почечных трансплантатах, консервированных с применением «привод–давление» АП. У парных почек при использовании метода «привод–поток» эти изменения отсутствовали. Частота отторжения трансплантата была одинаковой при применении обоих методов гипотермической АП.

В зависимости от критериев донора персистирующая протеинурия регистрировалась на 25 % чаще у пациентов, получивших почки консервированных АП с применением «привод–давление», чем при использовании принципа «привод–поток». Механизмы регуляции эндотелиопротективных процессов, вероятнее всего, лежат в основе достижения лучших результатов при использовании АП с принципом «привод–поток» по сравнению с системой «привод–давление», особенно если используются органы от доноров с расширенными критериями.

Использование доноров с расширенными критериями приводит к более высокой стоимости лечения. К основным статьям расходов при этом относятся увеличение числа проведенных в стационаре койко-дней, потребность в проведении массы сеансов гемодиализа в раннем посттрансплантационном периоде, необходимость повторных госпитализаций. Использование методов низкотемпературной АП особенно важно при трансплантации почки от доноров с расширенными критериями. Применение АП позволяет снижать частоту развития случаев отсроченной функции трансплантата и первично нефункционирующих трансплантатов, тем самым снижая общую стоимость лечения [40]. АП улучшает отдаленные результаты трансплантации почки, несмотря на первичные повышенные затраты [41]. В будущем гипотермическая машинная перфузия может стать стандартной процедурой при консервации органов, что увеличит период полужизни трансплантированной почки и уменьшит экономические затраты при трансплантации почки.


Литература


1. Pham P.T., Pham P.A., Pham P.C. et al. Evaluation of adult kidney transplant candidates // Semin. Dial. – 2010. – Vol. 23(6). – P. 595–605.
2. Organasacion Nacional de Transplante (ONT): Accessed June 13. – 2012. Avaliable at: http://www.ont.es/infesp/paginas/memorias.aspx.
3. Pascual J., Zamora J., Pirsh J.D. A systematic review of kidney transplantation from expanded criteria donors // Am. J. Kidney Dis. – 2008. – Vol. 553. –
P. 208.
4. Eltzschig H.K., Eckle T. Ischemia and reperfusion – from mechanism to transplantation // Nat. Med. – 2011. – Vol. 17. – P. 1391.
5. Kedzierska K., Domanski M., Sporniak-Tutak K. et al. Oxidative stress and renal intestinal fibrosis in patients after renal transplantation: current state of knowledge // Transplant. Proc. – 2011. – Vol. 43. – P. 3577.
6. Land W. The role of postischemic reperfusion injury and other nonantigen-dependent inflammatory pathways in transplantation // Transplantation. – 2005. – Vol. 79. – P. 505.
7. Abdelnour Т., Rieke S. Relationship of hormonal resuscitation therapy and central venous pressure on increasing organs for transplant // J. Heart Lung. Transplant. – 2009. – Vol. 28. – P. 480.
8. Von Heesen M., Siebert K., Huser M. at al. Multidrug donor preconditioning protects steatotic liver grafts against ischemia-reperfusion injury // Am. J. Surg. –
2012. – Vol. 203. – P. 168.
9. Kwiatkowski A., Wszola M., Kosieradzki M. et al. The early and long term function and survival of kidney allograft stored before transplantation by hypothermic pulsatile perfusion. A prospective randomized study // Ann. Transplant. – 2009. – Vol. 14. – P. 14.
10. Moers C., Smits J.M., Maathuis M.H.J. et al. Machine Perfusion or cold storage in deseased-donor kidney transplantation // N. Engl. J. Med. – 2009. –
Vol. 360. – P. 7.
11. Kwiatkowski A., Danielewicz R., Polak W. et al. Storage by continuous hypothermic perfusion for kidney harvested from hemodynamically unstable donors // Transplant. Proc. – 1996. – Vol. 28. – P. 306.
12. Kwiatkowski A., Wszola M., Kosieradzki M. et al. Machine perfusion preservation improves renal allograft survival // Am. J. Transplant. – 2007. – Vol. 7. – P. 1942.
13. Moers C., Pirenne J., Paul A. et al. Machine Perfusion or cold storage in deseased- donor kidney transplantation // N. Engl. J. Med. – 2012. – Vol. 366. – P. 770.
14. Kwiatkowski A., Wszola M., Perkowska-Plasinska A. et al. Influence of preservation method on histopathological lesions kidney allografts // Ann. Transplant. – 2009. – Vol. 14. – P. 10.
15. Gracia-Sancho J., Villareal G.Jr., Zhang Y. et al. Flow cessation triggers endothelial dysfunction during organ cold storage conditions: strategies for pharmacologic intervention // Transplantation. – 2010. – Vol. 90. – P. 142.
16. Wszola M., Kwiatkowski A., Domagala P. et al. Preservation of kidneys by machine perfusion influence gene expression and may limit ischemia/reperfusion injury // Am. J. Transplant. – 2008. – Vol. 8(2). – P. 475.
17. Fuhrman F.A., Field J. The reversibility of the inhibition of rat brain and kidney metabolism by cold // Am. J. Physiol. – 1943. – V. 139. – P. 193–196.
18. Kisser J.C., Farley H.H., Mueller G.F. et al. Successful renal autografts in the dog after seven hour selective kidney refrigeration // Surg. Forum. – 1960. – Vol. 11. – P. 26–28.
19. Lapchinsky A.G. Recent results of experimental transplantation of preserved limbs and kidneys and possible use of this technique in clinical practice // Ann. N.Y. Acad. Sci. – 1960. – Vol. 87. – P. 539–569.
20. Belzer F.O., Ashby B.S., Huang J.S. et al. Etiology of rising perfusion pressure in isolated organ perfusion // Ann. Surg. – 1968. – Vol. 168. – P. 382–391.
21. Belzer F.O., Kountz S.L. Preservation and transplantation of human cadaver kidneys: a two year experience // Ann. Surg. – 1970. – Vol. 172. –
P. 394–404.
22. Cypel M., Yeung J.C., Machuca T. et al. Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. – 2012. – Vol. 144. – P. 1200.
23. Guarera J.V., Henry S.D., Lee H.T. et al. Hypothermic machine preservation attenuates ischemia/reperfusion marcers after liver transplantation: preliminary results // J. Surg. Res. – 2011. – Vol. 167. – P. 365.
24. Dekker R.J., van Soest S., Fontijn R.D. et al Prolonged fluid shear stress induces a distinct set of endothelial cell genes, most specifically lung Kruppel-like factor (KLF2) // Blood. – 2002. – Vol. 100. – P. 1689–1698.
25. Pham P.T., Pham P.A., Pham P.C. et al. Evaluation of adult kidney transplant candidates // Semin. Dial. – 2010. – Vol. 23(6). – P. 595–605.
26. Wani M.A., Conkright M.D., Jeffries S. et al. cDNA isolation, genomic structure, regulation, and chromosomal localization of human lung Kruppel-like factor // Genomics. – 1999. – Vol. 60(1). – P. 78–86.
27. Whitman M., Downes C.P., Keeler M. et al. Type I phosphatidylinositol kinase makes a novel inositol phospholipid, phosphatidylinositol-3-phosphate // Nature. – 1988. – Vol. 332(6165). – P. 644–646.
28. Nolan G.P., Ghosh S., Liou H.C. et al. DNA binding and I kappa В inhibition of the cloned p65 subunit of NF-kappa B, a rel-related polypeptide // Cell. – 1991. – Vol. 64(5). – P. 961–969.
29. Eckner R., Ewen M.E., Newsome D. et al. Molecular cloning and functional analysis of the adenovirus E1A-associated 300-kD protein (p300) reveals a protein with properties of a transcriptional adaptor // Genes. Dev. – 1994. – Vol. 8(8). – P. 869–884.
30. Cybulsky M., Fries J.W., Williams A.J. et al. The human VCAM1 gene is assigned to chromosome Ip31-p32 // Cytogenet. Cell Genet. – 1991. – Vol. 58. – P. 1852.
31. Collins Т., Williams A., Johnston G.I. et al. Structure and chromosomal location of the gene for endothelial-leukocyte adhesion molecule 1 // J. Biol. Chem. – 1991. – Vol. 266(4). – P. 2466–2473.
32. Atkins G.B., Jain M.K. Role of kruppel-like transcription factors in endothelial biology // Circ. Res. – 2007. – Vol. 100(12). – P. 1686–1695.
33. Henry S.D., Guarella J.V. Protective effects of hypothermic ex vivo perfusion on ischemia/reperfusion injury and transplant outcomes // Transplant. Rev. – 2012. – Vol. 26. – P. 163.
34. Codas R., Thuillier R., Delpech P.O. et al. Preclinical comparison between perfusion machines ORS Lifeport and Waters RM3 // Abstracts of the Furst International Meeting on Ishemia Reprfusion Injuries in Transplantation (IMIRT). – 2012. – P. 15–16.
35. Wszola M., Kwiatkowski A., Domagala P. et al. One year result of a prospective randomized trial comparing two machine perfusion devices used for kidney preservation. Transplant international: official journal of the European Society for Organ // Transplantation. – 2013. – Vol. 26(11). –
P. 1088–1096.
36. Organasacion Nacional de Transplante (ONT): Accessed June 13. – 2012. Avaliable at: http://www.ont.es/infesp/paginas/memorias.aspx
37. Bellomo R. Bench-to-bedside review: lactate and the kidney // Clin. Care. – 2002. – Vol. 6. – P. 322–326.
38. Johnson R.W., Anderson M., Taylor R.M., SwinneyJ. Significance of perfusate lactic acidosis in cadawering renal transplantation // Brit. Med. J. – 1973. – Vol. 1. – P. 391–395.
39. Gomez V., Galeano C., Dies V. et al. Economic inpact of the introduction of machine perfusion preservation in a kidney transplantation program in the expanded donor era: cost-effective assessment // Transplant. Proc. – 2012. – Vol. 44. – P. 9.
40. Garfield S.S., Poret A.W., Ewans R.W. The cost-effectiveness of organ preservations methods in renal transplantation // Transplant. Proc. – 2009. – Vol. 41. – P. 3531.
41. Moers C., Pirenne J., Paul A. et al. Machine Perfusion or cold storage in deseased- donor kidney transplantation // N. Engl. J. Med. – 2012. – Vol. 366. – P. 770.


Об авторах / Для корреспонденции


Информация об авторах:
Степанов В.А. – старший научный сотрудник отделения органного донорства МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского
Коршунов К.А. – научный сотрудник отделения органного донорства МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского
Янковой А.Г. – ведущий научный сотрудник отделения трансплантологии
и диализа МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского. е-mail: 48yankovoy@mail.ru


Похожие статьи


Бионика Медиа