ISSN 2075-3594 (Print)
ISSN 2414-9322 (Online)

Биологическое значение дифференциально-экспрессируемых генов гипоксически-ишемического острого повреждения почек

С.В. Попов, Р.Г. Гусейнов, А.М. Есаян, О.Н.Скрябин, А.В. Васин, А.В. Ковалевская, В.В. Перепелица, А.Х. Бештоев, Т.А. Лелявина

1) СПб.ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки», Санкт-Петербург, Россия; 2) ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова», Санкт-Петербург, Россия; 3) Санкт-Петербургский государственный университет, Санкт-Петербург, Россия; 4) ФГБУ НИИ гриппа им. А.А. Смородинцева, Санкт-Петербург, Россия; 5) ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова», Санкт-Петербург, Россия 6) Частное образовательное учреждение высшего образования Санкт-Петербургский медико-социальный институт, Санкт-Петербург, Россия; 7) Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, Институт биомедицинских систем и биотехнологий, Санкт-Петербург, Россия; 8) ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Россия
Изучение причин и механизмов острого повреждения почек (ОПП) является актуальной задачей современной урологии, поскольку приводит к лучшему пониманию патологии и облегчает поиск эффективных терапевтических стратегий.
Материал и методы. В данной статье проанализированы источники литературы, посвященные значимости биомаркеров, изменение уровня экспрессии которых доказано при ОПП.
Результаты. Многообразие патогенетических механизмов обусловливает участие множества генов в каскаде патологических реакций, которые приводят к ОПП. Генетическое профилирование, нацеленное на поиск генетических детерминант ОПП, позволит в ранние сроки выявить пациентов, находящихся в группе риска, и персонализировать профилактические меры в соответствии с современной моделью пациент-ориентированной медицины.
Заключение. Однако на сегодняшний день генетические варианты биомаркеров повреждения почек и их связь с предрасположенностью к ОПП не определены, а диагностические панели экспрессионных генетических биомаркеров повреждения почек
в рутинной клинической практике не применяются.

Ключевые слова

острое повреждение почек
биомаркеры
экспрессия генов
полиморфизм генов

Введение

Острое повреждение почек (ОПП) − распространенное состояние, которое встречается у 5,0–7,5% госпитализированных пациентов и у 50–60% пациентов в критическом состоянии, являясь независимым фактором высокого риска смертности [1–3]. В настоящее время стандартными критериями диагностики ОПП служат нарастание уровня сывороточного креатинина и/или снижение диуреза в течение фиксированного периода времени [4]. Однако эти индикаторы обладают ограниченной чувствительностью и специфичностью в отношении ОПП, а также отсроченно реагируют на почечное повреждение, поэтому не могут считаться ранним маркером повреждения почек [5]. Ввиду этого в настоящее время пристальное внимание уделяется поиску ранних диагностических биомаркеров ОПП, уровень которых увеличивается еще до повышения уровня креатинина в сыворотке [6–8].

Профилактика развития и прогрессирования ОПП на сегодняшний день ограничивается оптимизацией гемодинамики и водного статуса пациентов из группы риска, а также предупреждением воздействия нефротоксинов [4, 9]. Следует отметить, что ОПП является потенциально обратимым состоянием, поскольку эпителий почечных канальцев обладает высокой способностью к регенерации. Однако поиск специфического фармакологического лечения ОПП затруднен поздней диагностикой, сложной и не до конца выясненной патофизиологией этого состояния [2]. По мнению ряда авторов, ОПП представляет собой гетерогенный синдром с различной этиологией и патофизиологией, обусловленный разнообразными клеточными и молекулярными событиями, без изучения которых затруднено понимание заболевания и, соответственно, поиск эффективных терапевтических стратегий [10–12].

Основными патогенетическими звеньями ОПП являются ишемия, гипоксия, повышение уровня провоспалительных цитокинов и воспаление, активация системы комплемента, лейкоцитарная инфильтрация, снижение уровня аденозинтрифосфата, повышенная генерация активных форм кислорода, дисфункция эндотелия, нарушение микроциркуляции, которые в итоге приводят к повреждению структур нефрона [13, 14]. Известно, что состояние гипоксии и ишемии увеличивает транскрипцию ряда генов [15, 16]. В связи с этим одним из способов изучения какого-либо патологического состояния является поиск генов, уровень экспрессии которых меняется при наличии этого состояния по сравнению с нормой. Предполагается, что генетические факторы обусловливают разную восприимчивость к повреждающим почки факторам, тяжесть течения ОПП и ответ на лечение у разных пациентов [17, 18]. При этом гены, уровень транскрипционной активности которых меняется в тканях при патологии, могут быть вовлечены в патогенез заболевания путем изменения качества своего участия в функциональных процессах или работе сигнальных путей [19]. Многообразие патогенетических механизмов ОПП позволяет предположить существенную вариабельность генетических факторов, отвечающих за тяжесть течения и исход заболевания. Таким образом, изучение молекулярных маркеров ОПП является актуальной задачей современной урологии.

Цель исследования − изучить значимость биомаркеров, уровень экспрессии которых повышается при ОПП гипоксически-ишемического генеза.

Материал и методы

Проведен поиск литературных источников в базах PubMed, Scopus, Springer, Elibrary на русском и английском языках с использованием терминов «острое почечное повреждение», «биомаркеры», «экспрессия генов», «полиморфизм генов» («acute kidney injury», «biomarkers», «gene expression», «gene polymorphism»). В обзор были включены ретроспективные, проспективные, аналитические, описательные исследования, клинические рекомендации, систематические обзоры, мета-анализы по анализируемой теме. Не рассматривались тезисы конференций, описания клинических случаев, диссертационные работы, письма в редакцию журналов. С учетом небольшого числа публикаций в доступных источниках по теме исследования глубина поиска была с 1993 по 2023 г. В итоге в настоящий обзор включены 62 публикации.

Результаты

К белкам, экспрессия которых повышается при ОПП, относятся липокалин, связанный с желатиназой нейтрофилов (NGAL – Neutrophil gelatinase-associated lipocalin, LCN2 – липокалин-2), молекула почечного повреждения почек-1 (KIM-1 – kidney injury molecule), печеночный протеин, связывающий жирные кислоты (L-FABP – Liver-type fatty acid binding protein), интерлейкин-18 [4]. При остром ишемически-реперфузионном повреждении почечной ткани экспрессия генов этих белков в клетках почечных канальцев существенно возрастает, что приводит в течение последующих 6–12 часов к резкому возрастанию их синтеза с многократным увеличением выделения с мочой еще до повышения уровня креатинина в крови [20].

NGAL кодируется геном, расположенным в хромосомном локусе 9q34, и представляет собой белок массой 25 кДа, принадлежащий к суперсемейству липокалинов. Ген NGAL на постоянно низком уровне экпрессирован в нейтрофилах, клетках проксимальных и дистальных почечных канальцев, печени, трахее, легких и других тканях. В физиологических условиях белок циркулирует в плазме крови в небольшой концентрации и определяется в моче в следовых количествах. При ОПП происходит быстрое многократное увеличение синтеза матричной РНК (мРНК), кодирующей NGAL, в клетках проксимальных канальцев и дистальных сегментах нефрона, что приводит к возрастанию синтеза белка уже через 3–6 часов после повреждения почек и повышению его мочевой экскреции. Следует отметить, что при ОПП уровень NGAL в плазме крови возрастает в 7–16 (сывороточный NGAL, sNGAL), а в моче – в 25–1000 раз (NGAL мочи – uNGAL). Кроме того, повышение экскреции NGAL с мочой возникает на 24–48 часов раньше, чем повышение концентрации сывороточного креатинина. Таким образом, sNGAL и uNGAL на сегодняшний день признаны ранними биомаркерами ОПП [21].

В экспериментальном исследовании J. Mishra и соавт. (2003) в модели ишемически-реперфузионного повреждения почек у мышей и крыс выраженное (более чем в 10 раз) повышение уровня мРНК и белка NGAL в моче наблюдалось в раннем постишемическом периоде (через 2 часа после повреждения), коррелировало с выраженностью и продолжительностью ишемии почек и предшествовало появлению других мочевых маркеров, таких как N-ацетил-β-D-глюкозаминидаза и β2-микроглобулин [22].

В работе B. Woodson и соавт. (2013) у крыс отмечалась повышенная экспрессия uNGAL уже через 30 минут после пережатия сосудов ворот почки и сохранялась через 15 и 60 минут [23]. У пациентов после нефрэктомии и резекции почки по поводу рака исследование в динамике уровня NGAL мочи позволяет выявлять ОПП уже через 2 часа, при этом максимальные значения уровня биомаркера отмечаются через 8 часов после хирургического вмешательства [24].

В мета-анализе данных 19 исследований, включивших более 2500 пациентов, было обнаружено, что уровни NGAL в сыворотке и моче не только являются ранними диагностическими биомаркерами ОПП, но и способны предсказывать клинические исходы (чем выше уровень NGAL, тем тяжелее ОПП), необходимость в диализной терапии и смертность пациентов [25].

В исследовании Y. Jiang и соавт. (2022) показано, что уровень sNGAL был значительно повышен у беременных женщин с артериальной гипертензией (АГ) с ОПП и положительно коррелировал с уровнями креатинина сыворотки, азота мочевины, мочевой кислоты, систолическим и диастолическим артериальным давлением, а также с уровнями белка в суточной моче [26].

Известно, что ОПП является достаточно частым осложнением кардиохирургических вмешательств в условиях искусственного кровообращения [27]. В зависимости от исходных характеристик и типа хирургического вмешательства частота ОПП в этих случаях составляет до 39%, причем от 1,0 до 6,5% пациентов нуждаются в заместительной почечной терапии [28]. Ввиду этого пристальное внимание уделяется поиску ранних предикторов острого нарушения функции почек у больных данной категории. Исследования свидетельствуют, что уровень NGAL является чувствительным предиктором развития ОПП после хирургического вмешательства с применением аппарата искусственного кровообращения, а также после проведения коронарографии и, следовательно, его следует учитывать в моделях прогнозирования ОПП после операции на сердце.

Например, M. Bennett и соавт. (2008) обнаружили, что уровень NGAL в моче после операции в условиях искусственного кровообращения увеличивался в 15 раз через 2 часа и до 25 раз через 4–6 часов, а также коррелировал с тяжестью и прогнозом ОПП [29].

Позднее M.G. Friedrich и соавт. (2017) изучили связь экспрессии NGAL в моче пациентов, перенесших кардиохирургическое вмешательство в условиях искусственного кровообращения, с послеоперационной функцией почек [30]. Экспрессия NGAL в моче достоверно увеличилась через 120 минут пребывания пациента на аппарате искусственного кровообращения, а также через 15 минут и 4 часа после него по сравнению с исходным уровнем. Однако корреляции между экспрессией NGAL и тяжестью ОПП авторами исследования не было выявлено.

В недавнем исследовании B. Zhang и соавт. (2023) изучили периоперационные уровни экспрессии KIM-1, NGAL и гемоксигеназы-1 (HO-1) у 80 пациентов через 12, 24 и 48 часов после замены сердечного клапана в условиях искусственного кровообращения [31]. Послеоперационный уровень NGAL у пациентов как с ОПП, так и без него был статистически значимо выше, чем до операции, причем у пациентов с диагностированным ОПП был повышен более существенно.

По данным E. Kidher и соавт. (2014), через 3 часа после искусственного кровообращения уровень sNGAL оказался гораздо более сильным предиктором ОПП и необходимости раннего медицинского вмешательства, чем сывороточный креатинин [32]. Так, уровень sNGAL выше 150 нг/мл через 3 часа после искусственного кровообращения значимо коррелировал с ОПП (r=0,68; p<0,001), а уровень выше 136 нг/мл − с необходимостью раннего медицинского вмешательства (r=0,64; p<0,001).

KIM-1 представляет собой гликопротеин клеточной мембраны I типа массой 104 кДа и является ранним чувствительным диагностическим индикатором ОПП [33, 34]. В 1998 г. в экспериментальном исследовании на крысах был выделен ген Kim-1 (CD365), который оказался полным гомологом HAVcr-1 (hepatitis A virus cellular receptor 1) [35]. В геноме человека HAVcr-1 (Gene ID: 26762) расположен на длинном плече 5-й хромосомы в локусе 5q33.3 и содержит 11 экзонов. В норме ген KIM-1 экспрессируется во многих органах и тканях человека, но уровень его экспрессии низкий, в то время как в почечной ткани содержание транскриптов HAVcr-1 в десятки раз выше [36]. При этом в апикальных клетках проксимальных канальцев здоровых почек мРНК и белок KIM-1 экспрессируются на низком уровне, однако их концентрация резко возрастает в постишемической почечной ткани и, соответственно, в моче и в циркулирующей крови.

Исследования свидетельствуют, что концентрация KIM-1 в моче возрастает спустя 6 часов после ОПП и быстро увеличивается в течение ближайших 24 часов, включаясь в механизм, защищающий почки от острого повреждения [37, 38]. Предполагается, что KIM-1 играет важную роль в восстановлении морфологической целостности почечной ткани и функции постишемической почки, отражая уровень ее репарации [39].

P.L. Zhang и соавт. (2008) показали, что уровень KIM-1 чувствительно и специфично выявляет повреждение проксимальных канальцев и коррелирует со степенью почечной дисфункции [40]. В частности, экспрессия KIM-1 значительно коррелировала с уровнями сывороточного креатинина и азота мочевины крови и была обратно пропорциональна расчетной скорости клубочковой фильтрации в день биопсии почки. Авторы сделали вывод, что экспрессия KIM-1 более чувствительна, чем гистологическое исследование, относительно выявления раннего повреждения почечных канальцев и ее уровень экспрессии в биоптатах трансплантатов отражает возможность восстановления функции почек.

W.K. Han и соавт. (2002) продемонстрировали выраженную экспрессию KIM-1 в биоптатах почек 6 пациентов с острым тубулярным некрозом и обнаружили повышенные уровни KIM-1 в моче в течение 12 часов после ишемического повреждения почек до появления цилиндров в моче [41]. Более того, данная работа показала, что повышенный уровень KIM-1 был связан с более чем 12-кратным повышением риска развития острого тубулярного некроза.

На сегодняшний день в исследованиях доказано, что уровень KIM-1 в моче и плазме крови коррелирует с выраженностью поражения почек различной этиологии [33], в т.ч. лекарственно-индуцированной нефротоксичности [42, 43]. Кроме того, уровень KIM-1 в моче наряду с концентрацией NGAL может служить инструментом прогнозирования острых осложнений после трансплантации почки, способствуя повышению выживаемости трансплантата [44].

По данным мета-анализа 11 исследований с включением 2979 пациентов, чувствительность KIM-1 в моче для диагностики ОПП составляет 74,0% (95% доверительный интервал [ДИ]: 61,0–84,0%), специфичность − 86,0% (95% ДИ: 74,0–93,0%) [45].

Вместе с тем B.D. Humphreys и соавт. (2013) выявили, что длительная экспрессия KIM-1 в клетках проксимальных канальцев трансгенных мышей вызывает хроническое воспаление и интерстициальный фиброз почечной ткани, который сопровождается протеинурией, анемией, гиперфосфатемией, АГ и гипертрофией сердца − симптомами, характерными для гипертензивной нефропатии [46].

Белки, связывающие жирные кислоты (FABP – fatty acid binding protein), представляют собой небольшие (15 кДа) цитоплазматические белки, обильно экспрессирующиеся во всех тканях с активным метаболизмом жирных кислот. В почках человека идентифицировано два типа FABP: FABP печеночного типа (L-FABP) в проксимальных канальцах и FABP сердечного типа (H-FABP) в дистальных канальцах. Свободные жирные кислоты в проксимальных канальцах связываются с цитоплазматическими FABP и транспортируются в митохондрии или пероксисомы, где метаболизируются путем β-окисления [47]. L-FABP специфически экспрессирован в цитоплазме клеток проксимальных канальцев почек, а ген FABP1 локализован на коротком плече p 2-й хромосомы человека.

В экспериментальных исследованиях установлено, что L-FABP гиперэкспрессируется в почечных канальцах и экскреция его с мочой возрастает при различных ситуациях, связанных с тубулоинтерстициальным повреждением: массивная протеинурия, диабетическая нефропатия, АГ, ишемическое или токсическое повреждение почек [48, 49]. Выделение L-FABP с мочой возрастает спустя 8 часов после ишемического повреждения и значимо коррелирует со степенью тубулоинтерстициального повреждения почечной ткани [50, 51]. Вместе с тем в исследовании M. Yanishi и соавт. (2022) увеличение экскреции L-FABP с мочой отмечалось уже в течение первых 6 часов после введения цисплатина пациентам и предшествовало повышению сывороточного креатинина более чем на 2 дня [52]. L-FABP играет существенную роль в развитии окислительного стресса и служит эффективным цитопротектором, направленным на уменьшение негативного действия свободных радикалов. Так, в экспериментальной работе D. Ichikawa (2014) при введении ангиотензина-II параллельно с увеличением мочевой экскреции L-FABP происходило уменьшение оксидативного стресса и тубулоинтерстициального повреждения [53]. Степень экспрессии L-FABP в почках и его уровни в моче увеличивались при активации ренин-ангиотензиновой системы и в совокупности со снижением уровня ангиотензина-I приводили к ослаблению тубулоинтерстициального процесса. Схожие данные получены в эксперименте на мышах K. Osaki и соавт. (2013), которые выявили, что сверэкспрессия L-FABP в проксимальных канальцах может предупреждать развитие солечувствительной АГ, индуцированной ангиотензином-II, путем ослабления активации внутрипочечной ренин-ангиотензиновой системы, снижения выработки активных форм кислорода и уменьшения тубулоинтерстициального воспаления [54].

Уровень L-FABP повышается при некрозе почечных канальцев различной этиологии: сепсисе, введении нефротоксичных препаратов, у пациентов после операций на сердце [55, 56]. При этом у пациентов с ОПП на фоне сепсиса четко прослеживалась связь между повышением экспрессии L-FABP и уровнем смертности.

Е.М. Франциянц и соавт. (2017) на основании собственных исследований предлагают использовать уровень L-FABP в качестве прогностического маркера повреждения почечной паренхимы в раннем послеоперационном периоде у больных, перенесших тепловую ишемию при резекции почки по поводу рака. Авторы рекомендуют при предоперационном уровне L-FABP 40 нг/мл и выше выполнять органосохраняющую операцию на почке длительностью не более 15 минут [57].

В недавнем проспективном исследовании с участием 82 пациентов P.G. Karakaş и соавт. (2022) убедительно показали, что L-FABP наряду с NGAL является эффективным биомаркером для раннего выявления ОПП, а также для прогнозирования клинической тяжести заболевания и необходимости проведения гемодиализа [58].

Интерлейкин-18 (ИЛ-18). Развитие воспаления является важным звеном патогенеза ОПП. В связи с этим много-обещающим представляется изучение полиморфизма генов провоспалительных цитокинов, которые отвечают за течение воспалительной реакции. Одним из наиболее важных провоспалительных генов, экспрессия которого увеличивается при ОПП, является ген, кодирующий цитокин ИЛ-18.

ИЛ-18 представляет собой цитокин, который был идентифицирован как фактор, индуцирующий интерферон-γ (ИФН-γ) в печени мышей, получавших Propionibacterium Acnes и липополисахарид [59]. ИЛ-18 вырабатывается макрофагами и другими клетками организма. Форма-предшественник ИЛ-18 массой 24 кДа расщепляется ИЛ-1β-превращающим ферментом с образованием зрелого белка ИЛ-18 массой 18 кДа. Имеются данные, что на уровень ИЛ-18 оказывают влияние полиморфизмы промотора гена этого цитокина − rs1946518 и rs187238 [60].

ИЛ-18 опосредует развитие острого тубулярного некроза почек [61]. Было показано, что уровень мРНК ИЛ-18 в почках значительно повышается в ранние сроки после ишемически-реперфузионного повреждения почек на фоне воспалительного/аутоиммунного нефрита, при введении цисплатина при отторжении почечного аллотрансплантата [62].

Систематический обзор и мета-анализ 11 исследований, охвативший 2796 пациентов из трех странах, показал высокую значимость ИЛ-18 в качестве биомаркера для раннего (менее 12 часов после повреждения) прогнозирования ОПП [61]. Установлено, что уровень ИЛ-18 в моче более 100 пг/мл свидетельствует о развитии ОПП, причем концентрация этого цитокина повышается на 48–72 часа раньше, чем возрастает уровень креатинина сыворотки крови [8].

Заключение

Современной концепцией здравоохранения является персонализированная (пациент-ориентированная) медицина, нацеленная на лечение пациентов с учетом их индивидуальных особенностей. Реализовать эту идею позволяет изучение генетического профиля пациентов и определение индивидуальных рисков. Многообразие патогенетических механизмов обусловливает участие множества генов в каскаде патологических реакций, которые приводят к ОПП. Прогнозирование развития ОПП на основе раннего выявления биомаркеров почечного повреждения предоставляет возможность для выбора оптимальной превентивной тактики. Однако на сегодняшний день генетические варианты биомаркеров почечного повреждения и их связь с предрасположенностью к ОПП не определены, а диагностические панели экспрессионных генетических маркеров ОПП в рутинной клинической практике не применяются, что может служить предметом дальнейших исследований в этой области.

Список литературы

  1. Gameiro J., Fonseca J.A., Outerelo C., Lopes J.A. Acute Kidney Injury: From Diagnosis to Prevention and Treatment Strategies. J. Clin. Med. 2020;9:1704. Doi: 10.3390/jcm9061704.
  2. Kellum J.A., Romagnani P., Ashuntantang G., et al. Acute kidney injury. Nat. Rev. Dis. Primers. 2021;7(1):52. Doi: 10.1038/s41572-021-00284-z.
  3. Hoste E.A.J., Kellum J.A., Selby N.M., et al. Global epidemiology and outcomes of acute kidney injury. Nat. Rev. Nephrol. 2018;14(10):607–25. Doi: 10.1038/s41581-018-0052-0.
  4. Острое повреждение почек. Клинические рекомендации. М., 2020. 142 с. 
  5. Zhang W.R., Parikh C.R. Biomarkers of Acute and Chronic Kidney Disease. Ann. RevPhysiol. 2019;81:309–33. Doi: 10.1146/annurev-physiol-020518-114605.
  6. Luft F.C. Biomarkers and predicting acute kidney injury. Acta Physiol. (Oxf). 2021;231(1):e13479. Doi: 10.1111/apha.13479.
  7. Мирошкина И.В., Грицкевич А.А., Байтман Т.П. и др. Роль маркеров острого повреждения почки в оценке функции почки при ее ишемии. Эксперим. и клин. урология. 2018;4:114–21. 
  8. Уразаева Л.И., Максудова А.Н. Биомаркеры раннего повреждения почек: обзор литературы. Практическая медицина. 2014;1(4):125–30. 
  9. Рей С.И., Бердников Г.А., Васина Н.В. Острое почечное повреждение 2020: эпидемиология, критерии диагностики, показания, сроки начала и модальность заместительной почечной терапии. Анестезиология и реаниматология. 2020;5:639. Doi: 0.17116/anaesthesiology202005163. 
  10. Kellum J.A., Prowle J.R. Paradigms of acute kidney injury in the intensive care setting. Nat. Rev. Nephrol. 2018;14(4):217–30. Doi: 10.1038/nrneph.2017.184.
  11. Devarajan P. The Current State of the Art in Acute Kidney Injury. Front. Pediatr. 2020;8:70. Doi: 10.3389/fped.2020.00070.
  12. Barasch J., Zager R., Bonventre J.V. Acute kidney injury: a problem of definition. Lancet. 2017;389(10071):779–81. Doi: 10.1016/S0140-6736(17)30543-3.
  13. Гребенчиков О.А., Лихванцев В.В., Плотников Е.Ю., Силачев Д.Н., Певзнер И.Б., Зорова Л.Д., Зоров Д.Б. Молекулярные механизмы развития и адресная терапия синдрома ишемии-реперфузии. Анестезиология и реаниматология. 2014;3:59–67. 
  14. Смирнов А.В., Румянцев А.Ш. Острое повреждение почек. Часть II. Нефрология. 2020;24(2):96–128. 
  15. Кит О.И., Франциянц Е.М., Димитриади С.Н. и др. Экспрессия молекулярных маркеров острого повреждения почек в динамике экспериментальной ишемии. Эксперим. и клин. урология. 2014;4:12–5. 
  16. Cardinal-Fernandez P., Ferruelo A., Martin-Pellicer A., et al. Genetic determinants of acute renal damage risk and prognosis: A systematic review. Med. Intensiva. 2012;36:626–33. Doi: 10.1016/j.medine.2012.11.003.
  17. Karimi M.H., Daneshmandi S., Pourfathollah A.A., et al. A study of the impact of cytokine gene polymorphism in acute rejection of renal transplant recipients. Mol. Biol. Rep. 2012;39:509–15. Doi: 10.1007/s11033-011-0765-7.
  18. Zibar L., Wagner J., Pavlinic D., et al. The relationship between interferon-gamma gene polymorphism and acute kidney allograft rejection. Scand. J. Immunol. 2011;73:319–24. Doi: 10.1111/j.1365-3083.2010.02506.x.
  19. Kunzendorf U., Haase M., Rölver L., Haase-Fielitz A. Novel aspects of pharmacological therapies for acute renal failure. Drugs. 2010;70(9):1099-114. Doi: 10.2165/11535890-000000000-00000.
  20. Wen Y., Parikh C.R. Current concepts and advances in biomarkers of acute kidney injury. Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 2021;58(5):354–68. Doi: 10.1080/10408363.2021.1879000.
  21. Marakala V. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin (NGAL) in kidney injury − A systematic review. Clin. Chim. Acta. 2022;536:135–41. Doi: 10.1016/j.cca.2022.08.029.
  22. Mishra J., Ma Q., Prada A., et al. Identification of neutrophil gelatinase-associated lipocalin as a novel early urinary biomarker for ischemic renal injury. J. Am. Soc. Nephrol. 2003;14(10):2534–43. Doi: 10.1097/01.ASN.0000088027.54400.C6
  23. Woodson B., Wang L., Mandava S., Lee B.R. Urinary cystatin C and NGAL as early biomarkers for assessment of renal ischemia-reperfusion injury: a serum marker to replace creatinine? J. Endourol. 2013;27:1510–15. Doi: 10.1089/end.2013.0198.
  24. Мосоян М.С., Аль-Шукри С.Х., Есаян А.М и др. NGAL-ранний биомаркер острого повреждения почек после резекции почки и нефрэктомии. Нефрология. 2013;17(2):55–9. 
  25. Haase M., Bellomo R., Devarajan P., et al. Accuracy of neutrophil gelatinase-associated lipocalin (NGAL) in diagnosis and prognosis in acute kidney injury: a systematic review and meta-analysis. Am. J. Kidney Dis. 2009;54(6):1012–24. Doi: 10.1053/j.ajkd.2009.07.020.
  26. Jiang Y., Jiang W., Li Y., et al. Evaluation of Klotho gene expression and NGAL levels following acute kidney injury during pregnancy hypertensive disorders. Pregnancy Hypertens. 2022;30:161–70. Doi: 10.1016/j.preghy.2022.08.008.
  27. Белов Ю.В., Катков А.И., Винокуров И.А. Риски и возможности профилактики развития острой почечной недостаточности у пациентов после операции на сердце. Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2015;8(3):1823. Doi: 10.17116/kardio20158318-23. 
  28. Dabbagh A., Esmailian F., Aranki S. Translated by Zhang Peide. Postoperative Intensive Care in Adult Cardiac Surgery. Second ed. Shandong Science and Technology Press. 2021:214–44.
  29. Bennett M., Dent C.L., Ma Q., et al. Urine NGAL predicts severity of acute kidney injury after cardiac surgery: a prospective study. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2008;3(3):665–73. Doi: 10.2215/CJN.04010907.
  30. Friedrich M.G., Bougioukas I., Kolle J., et al. NGAL expression during cardiopulmonary bypass does not predict severity of postoperative acute kidney injury. BMC. Nephrol. 2017;18(1):73. Doi: 10.1186/s12882-017-0479-8.
  31. Zhang B., Song Y., Ma Q., et al. Expression and Significance of KIM-1, NGAL, and HO-1 in Patients with Acute Kidney Injury After Cardiac Valve Replacement. J. Inflamm. Res. 2023;16:2755–61. Doi: 10.2147/JIR.S410338.
  32. Kidher E., Harling L., Ashrafian H., et al. Pulse wave velocity and neutrophil gelatinase-associated lipocalin as predictors of acute kidney injury following aortic valve replacement. J. Cardiothorac. Surg. 2014;9:89. Doi: 10.1186/1749-8090-9-89.
  33. Tanase D.M., Gosav E.M., Radu S., et al. The Predictive Role of the Biomarker Kidney Molecule-1 (KIM-1) in Acute Kidney Injury (AKI) Cisplatin-Induced Nephrotoxicity. Int. J. Mol. Sci. 2019;20(20):5238. Doi: 10.3390/ijms20205238.
  34. Кармакова Т.А., Сергеева Н.С., Канукоев К.Ю. и др. Молекула повреждения почек 1 (KIM-1): многофункциональный гликопротеин и биологический маркер (обзор). Соврем. технологии в медицине. 2021;13(3):64–80. Doi: 10.17691/stm2021.13.3.08. 
  35. Ichimura T., Bonventre J.V., Bailly V., et al. Kidney injury molecule-1 (KIM-1), a putative epithelial cell adhesion molecule containing a novel immunoglobulin domain, is up-regulated in renal cells after injury. J. Biol. Chem. 1998;273(7):4135-42. Doi: 10.1074/jbc.273.7.4135.
  36. The Human Protein Atlas. HAVCR1. URL:https://www.proteinatlas.org/ensg00000113249-havcr1.
  37. Lim A.I., Tanq S.C., Lai K.N., Leung J.C. Kidney injury molecule-1: more than just an injury marker of the epithelial cells. J. Cell. Physiol. 2013;228(5):917–24. Doi: 10.1002/jcp.24267.
  38. Zhang Z., Cai C.X. Kidney injury molecule-1 (KIM-1) mediates renal epithelial cell repair via ERK MAPK signaling pathway. Mol. Cell. Biophem. 2016;416(1–2):109–16. Doi: 10.1007/s11010-016-2700-7.
  39. Brooks C.R., Yeung M.Y., Brooks Y.S., et al. KIM-1-/TIM-1-mediated phagocytosis links ATG5-/ULK1-dependent clearance of apoptotic cells to antigen presentation. EMBO J. 2015;34(19):2441–64. Doi: 10.15252/embj.201489838.
  40. Zhang P.L., Rothblum L.I., Han W.K., et al. Kidney injury molecule-1 expression in transplant biopsies is a sensitive measure of cell injury. Kidney Int. 2008;73(5):608–14. Doi: 10.1038/sj.ki.5002697.
  41. Han W.K., Bailly V., Abichandani R., et al. Kidney Injury Molecule-1 (KIM-1): a novel biomarker for human renal proximal tubule injury. Kidney Int. 2002;62(1):237–44. Doi: 10.1046/j.1523-1755.2002.00433.x.
  42. Pang H.M., Qin X.L., Liu T.T., et al. Urinary kidney injury molecule-1 and neutrophil gelatinase-associated lipocalin as early biomarkers for predicting vancomycin-associated acute kidney injury: a prospective study. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2017;21(18):4203–13.
  43. Griffin B.R., Faubel S., Edelstein C.L. Biomarkers of Drug-Induced Kidney Toxicity. Ther. Drug Monit. 2019;41(2):213–26. Doi: 10.1097/FTD.0000000000000589.
  44. Tabernero G., Pescador M., Ruiz Ferreras E., et al. Evaluation of NAG, NGAL, and KIM-1 as Prognostic Markers of the Initial Evolution of Kidney Transplantation. Diagnostics (Basel). 2023;13(11):1843. Doi: 10.3390/diagnostics13111843.
  45. Shao X., Tian L., Xu W., et al. Diagnostic value of urinary kidney injury molecule 1 for acute kidney injury: a meta-analysis. PLoS One. 2014;9(1):e84131. Doi: 10.1371/journal.pone.0084131.
  46. Humphreys B.D., Xu F., Sabbisetti V., et al. Chronic epithelial kidney injury molecule-1 expression causes murine kidney fibrosis. J. Clin. Invest. 2013;123(9):4023–35. Doi: 10.1172/JCI45361.
  47. Yoon S.Y., Kim J.S., Jeong K.H., et al. Acute Kidney Injury: Biomarker-Guided Diagnosis and Management. Medicina (Kaunas). 2022;58(3):340. Doi: 10.3390/medicina58030340.
  48. Okuda H., Obata Y., Kamijo-Ikemori A., Inoue S. Quantitative and qualitative analyses of urinary L-FABP for predicting acute kidney injury after emergency laparotomy. J. Anesth. 2022;36(1):38–45. Doi: 10.1007/s00540-021-03003-w.
  49. Kamijo-Ikemori A., Ichikawa D., Matsui K., et al. Urinary L-type fatty acid binding protein (L-FABP) as a new urinary biomarker promulgated by the Ministry of Health, Labour and Welfare in Japan. Rinsho Byori. 2013;61(7):635–40. Japanese.
  50. Yamamoto T., Noiri E., Ono Y., et al. Renal L-type fatty acid-binding protein in acute ischemic injury. J. Am. Soc. Nephrol. 2007;18(11):2894–902. Doi: 10.1681/ASN.2007010097.
  51. Yokoyama T., Kamijo-Ikemori A., Sugaya T., et al. Urinary excretion of liver type fatty acid binding protein accurately reflects the degree of tubulointerstitial damage. Am. J. Pathol. 2009;174(6):2096–106. Doi: 10.2353/ajpath.2009.080780.
  52. Yanishi M., Kinoshita H. Urinary L-type fatty acid-binding protein is a predictor of cisplatin-induced acute kidney injury. BMC Nephrol. 2022;23(1):125. Doi: 10.1186/s12882-022-02760-4.
  53. Ichikawa D., Kamijo-Ikemori A., Sugaya T., et al. Renoprotective effect of renal liver-type fatty acid binding protein and angiotensin II type 1a receptor loss in renal injury caused by RAS activation. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2014;306(6):F655–63. Doi: 10.1152/ajprenal.00460.2013.
  54. Osaki K., Suzuki Y., Sugaya T., et al. Amelioration of angiotensin II-induced salt-sensitive hypertension by liver-type fatty acid-binding protein in proximal tubules. Hypertension. 2013;62(4):712–18. Doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.113.01203.
  55. Пролетов Я.Ю., Саганова Е.С., Смирнов А.В., Зверьков Р.В. Биомаркеры в диагностике острого повреждения почек. Сообщение II. Нефрология. 2014;18(6):51–8. 
  56. Ни А.Н., Сергеева Е.В., Шуматова Т.А. и др. Возможности использования маркера L-FABP в диагностике повреждения почек. Соврем. проблемы науки и образования. 2018;4. Режим доступа: https://science-education.ru/ru/article/view?id=27874 (дата обращения: 27.02.2024. 
  57. Франциянц Е.М., Ушакова Н.Д., Кит О.И. и др. Динамика маркеров острого почечного повреждения при резекции почки по поводу рака. Общая реаниматология. 2017;13(6):38–47. 
  58. Karakaş P.G., Çalişkan F., Kati C., Tunçel Ö.K. The Importance of Neutrophil Gelatinase-Associated Lipocalin and Liver Type Fatty Acid Binding Protein in Acute Kidney Injury. Clin. Lab. 2022;68(10).
  59. Nakamura K., Okamura H., Nagata K., et al. Purification of a factor which provides a costimulatory signal for gamma interferon production. Infect. Immun. 1993;61(1):64–70. Doi: 10.1128/iai.61.1.64-70.1993.
  60. Ortega-Loubon C., Martínez-Paz P., García-Morán E., et al. Genetic Susceptibility to Acute Kidney Injury. J. Clin. Med. 2021;10(14):3039. Doi: 10.3390/jcm10143039.
  61. Lin X., Yuan J., Zhao Y., Zha Y. Urine interleukin-18 in prediction of acute kidney injury: a systemic review and meta-analysis. J. Nephrol. 2015;28(1):7–16. Doi: 10.1007/s40620-014-0113-9.
  62. Leslie J.A., Meldrum K.K. The role of interleukin-18 in renal injury. J. Surg. Res. 2008;145(1):170–5. Doi: 10.1016/j.jss.2007.03.037.

Об авторах / Для корреспонденции

Попов Сергей Валерьевич – д.м.н., профессор, главный врач СПб. ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки», руководитель Центра эндоскопической урологии и новых технологий, профессор кафедры урологии ВМедА. Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46; тел. +7 (812) 576-11-08;
e-mail: doc.popov@gmail.com. ORCID: 0000-0003-2767-7153
Гусейнов Руслан Гусейнович – к.м.н., заместитель главного врача по научной деятельности СПб ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки», ассистент кафедры госпитальной хирургии Санкт-Петербургского государственного университета. Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46; тел. +7 (812) 576-11-08;
e-mail: rusfa@yandex.ru. ORCID: 0000-0001-9935-0243
Есаян Ашот Мовсесович – д.м.н. профессор, заведующий кафедрой нефрологии и диализа ФПО ПСПбГМУ им. акад. И.П. Павлова, главный внештатный нефролог СЗФО РФ. Адрес: 197022 Санкт-Петербург, ул. Л. Толстого, 17; тел. +7 (812) 338-69-20; e-mail: essaian.ashot@gmail.com. ORCID: 0000-0002-7202-3151
Скрябин Олег Николаевич – д.м.н., профессор, главный онколог СПб ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки», научный руководитель центра эндоскопической урологии и новых технологий. Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46; тел. +7 (812) 576-11-08; e-mail: skryabin_55@mail.com.
ORCID: 0000-0002-6664-2861. 0000-0003-4064-5033
Васин Андрей Владимирович – директор института биомедицинских систем и биотехнологий, Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, д.б.н., доцент, профессор Российской академии наук. Адрес: 194021 Санкт-Петербург, ул. Хлопина, 11; тел. +7 (812) 290-95-00;
e-mail: vasin_av@spbstu.ru. ORCID: 0000-0002-1391-7139
Ковалевская Анастасия Витальевна – врач-нефролог СПб. ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки». Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46;
тел.+7 (812) 576-11-08; e-mail: stenia1407@mail.ru. ORCID: 0009-0004-9544-7944
Перепелица Виталий Владимирович – к.м.н., врач уролог СПб ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки». Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46; тел. +7 (812) 576-11-08; e-mail: perepelitsa_vit@mail.ru. ORCID: 0000-0002-7656-4473
Бештоев Ахмед – стажер-исследователь СПб ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки». Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46;
тел. +7 (812) 576-11-08; e-mail: akhmed.beshtoev@gmail.com
Лелявина Татьяна Александровна – ведущий научный сотрудник ИЭМ ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова, научный сотрудник СПб ГБУЗ «Клиническая больница Святителя Луки». Адрес: 194044 Санкт-Петербург, ул. Чугунная, 46; тел. +7 (891) 908-90-18; e-mail: tatianalelyavina@mail.com. ORCID: 0000-0001-6796-4064

Также по теме