ISSN 2075-3594 (Print)
ISSN 2414-9322 (Online)

Клинический случай успешного лечения гранулематоза с полиангиитом

Фролова Н.Ф., Мутовина З.Ю., Кобзарь М.В., Арболишвили Г.Н., Павлов Д.П., Шмелева Д.Ю., Манеров Ф.Ф., Лысенко М.А.

1) ГБУЗ «Городская клиническая больница № 52» ДЗМ, Москва, Россия; 2) ФГБОУ ВО «Российский университет медицины Минздрава РФ», Москва, Россия; 3) ФГБУ «Центральная государственная медицинская академия УДП РФ», Москва, Россия; 4) ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова», Москва, Россия; 5) ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава РФ, Москва, Россия
Васкулит, ассоциированный с антинейтрофильными цитоплазматическими антителами – ANCA (Anti-neutrophil cytoplasmic antibody), – системное аутоиммунное заболевание, характеризующееся развитием некротизирующего воспаления в мелких кровеносных сосудах с поражением различных органов и систем. Глюкокортикостероиды (ГКС) в сочетании с ритуксимабом или циклофосфамидом рекомендованы в качестве патогенетической терапии ANCA-васкулита и способствуют восстановлению функции почек, снижению смертности. Однако применение данных лекарственных препаратов связано с определенными побочными эффектам, в первую очередь это касается настороженности в отношении ГКС. В связи с этим идет постоянный поиск препаратов, которые могли бы обеспечивать как достижение клинической ремиссии ANCA-васкулита (как основной цели терапии), так и снижение дозы, а в идеальном случае – отмену ГКС. В связи с полученными данными о роли альтернативного пути комплемента в патогенезе ANCA-васкулита для его терапии был предложен авакопан, ингибитор рецептора C5a. В клиническом исследовании с участием пациентов с ANCA-ассоциированным васкулитом авакопан не уступал в отношении достижения ремиссии на 26-й неделе и по показателю превосходил достижения стойкой ремиссии на 52-й неделе группу терапии ГКС. Все пациенты в исследовании также получали циклофосфамид или ритуксимаб. Авакопан рекомендован KDIGO-2024 для включения в индукционную фазу терапии с целью снижения дозы ГКС пациентам с ANCA-гломерулонефритом.
Клинический случай. В статье представлен случай пациента с гранулематозом с полиангиитом (ГПА), который был диагностирован в далеко зашедшей стадии заболевания, с поражением жизненно важных органов и чрезвычайно высоким риском летального исхода. Тяжесть состояния пациента требовала проведения искусственной вентиляции легких с дальнейшей инициацией вено-венозной экстракорпоральной мембранной оксигенации (ЭКМО), а также заместительной почечной терапии. Терапия была инициирована с серией сеансов плазмообмена, пульс-терапии с последующим переходом на пероральные ГКС. Принимая во внимание тяжесть гломерулонефрита и инфекционные осложнения, решением консилиума была инициирована терапия незарегистрированным в РФ препаратом авакопан (в сочетании с циклофосфамидом и ритуксимабом).
Результаты. Спустя 8 месяцев от начала патогенетической терапии у пациента, постоянно принимавшего минимальную дозу ГКС и авакопан, клинически можно было констатировать ремиссию ГПА в отношении экстраренальных проявлений и частичную ремиссию гломерулонефрита.

Ключевые слова

ANCA-васкулит
быстропрогрессирующий гломерулонефрит
авакопан
плазмообмен
заместительная почечная терапия
глюкокортикостероиды
циклофосфамид
ритуксимаб
экстракорпоральная мембранная оксигенация

ANCA (Anti-neutrophil cytoplasmic antibody)-ассоциированные васкулиты – группа аутоиммунных заболеваний, характеризующихся развитием некротизирующего васкулита с поражением сосудов мелкого и среднего калибров, что определяет системность процесса – поражение многих систем и органов, особенно жизненно важных, таких как легкие и почки. Выделяют несколько фенотипов заболевания: микроскопический полиангиит (МПА), гранулематоз с полиангиитом (ГПА) и эозинофильный гранулематоз с полиангиитом [1–6].

В большинстве случаев клинические проявления ассоциированы с обнаружением в крови антител к цитоплазме нейтрофилов, протеиназе-3 (ПР-3) и к миелопироксидазе (МПО). В 5–30% случаев, по данным разных авторов, заболевание может протекать без появления в крови ПР3 и МПО – т.н. ANCA-негативный васкулит, имеющий типичную клиническую картину; в этом случае диагноз подтверждается данными морфологии [7–9]. В подавляющем большинстве случаев в патологический процесс включаются почки, поражение которых характеризуется развитием малоиммунного гломерулонефрита, который может приобретать быстропрогрессирующее течение с развитием острого почечного поражения, что определяет дальнейший прогноз для жизни пациента.

Основной целью лечения является достижение и поддержание полной ремиссии, которая подразумевает отсутствие признаков активности заболевания, подтвержденное с помощью общепринятых инструментов оценки, например BVAS (Berminghem Vasculitis Activity Score) [10–12]. Достижение данной цели и сохранение состояния ремиссии требуют постоянной поддерживающей иммуносупрессивной терапии. До настоящего времени в разряд патогенетической терапии ANCA-васкулита входят высокие дозы глюкокортикостероидов (ГКС) в виде пульсового введения с дальнейшим длительным приемом внутрь, цитостатики, анти-В-клеточная терапия. В особых случаях при развитии легочного кровотечения и быстропрогрессирующего гломерулонефрита в лечении также применяется терапевтический плазмообмен [13, 14].

Минимизация дозы или даже полная отмена ГКС – одна из целей поиска новых опций и совершенствования терапии ANCA-васкулита. В течение последних десятилетий были получены новые данные о патогенетических механизмах развития ANCA-васкулита, где большое значение отводится активации альтернативного пути комплемента. Высвобождение нейтрофилами, индуцированными инфекцией провоспалительных цитокинов и пропердина, запускающего каскад альтернативного пути комплемента, сопровождает гиперподукцию анафилотоксина С5а, взаимодействие которого с его рецептором на нейтрофилах усиливает и усугубляет воспалительный процесс в почечных клубочках [15–18]. С учетом полученных данных ингибитор рецептора комплемента С5а, препарат авакопан, был предложен в качестве вспомогательного средства, позволяющего минимизировать дозы или даже в некоторых случаях отменять ГКС, что чрезвычайно актуально для пациентов с ANCA-васкулитом в связи с необходимостью длительной поддерживающей терапии из-за частых рецидивов заболевания [19–22].

Авакопан представляет собой низкомолекулярный антагонист рецептора C5a для перорального применения, который избирательно блокирует действие C5a и тормозит процессы хемоаттрактации и активации нейтрофилов. На мышиной модели ANCA-ассоциированного васкулита авакопан предотвращал развитие гломерулонефрита, индуцированного антителами к МПО [23–25].

Авакопан показал положительный клинический эффект в отношении васкулита в исследованиях фазы 2 [26, 27].

В рандомизированном исследовании фазы 3 (ADVOCATE), в котором сравнивали авакопан с режимом постепенного снижения дозы преднизолона у пациентов с ANCA-ассоциированным васкулитом, одновременно принимавших иммунодепрессанты, было показано, что авакопан не уступал, но и не превосходил постепенную отмену преднизолона в отношении достижения ремиссии на 26-й неделе, но превосходил режим постепенной отмены ГКС в отношении достижения устойчивой ремиссии на 52-й неделе терапии. Все пациенты в исследовании дополнительно получали циклофосфамид или ритуксимаб [28, 29]. Авакопан (Тавнеос) получил одобрение американского управления по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (FDA) в октябре 2021 г. [30]. В январе 2022 г.

Европейская комиссия по фармаконадзору также одобрила авакопан в сочетании с ритуксимабом или циклофосфамидом для лечения взрослых пациентов с тяжелым активным ГПА или МПА – двумя основными формами АНСА-ассоциированного васкулита [31].

В рекомендациях KDIGO (2024) по лечению ANCA-васкулита подробно представлены все варианты терапии: пульс-терапия циклосфосфамидом, ритуксимабом, длительность и дозы ГКС. Также в обновленные рекомендации по результатам успешно завершенного исследования ADVOCATЕ был предложен препарат авакопан для включения в индукционную фазу терапии с целью снижения дозы ГКС пациентам с ANCA-гломерулонефритом [32].

Клинический случай

Пациент в возрасте 59 лет поступил в отделение реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) № 7 ГБУЗ «ГКБ № 52» 01.10.2023.

В анамнезе у пациента: повышение артериального давления, максимально до 150/100 мм рт.ст., в связи с чем он принимал ингибиторы ангиотензинпревращающего фермента. Пять лет до момента госпитализации начали беспокоить боли в крупных суставах, преимущественно в тазобедренных, изменения которых, по данным магнитно-резонансной томографии, трактовались как двусторонний коксартроз 3–4-й ст. Лабораторно эпизодически отмечалось повышение уровня С-реактивного белка (СРБ) до 2–3 норм, при этом ревматоидный фактор и HLA-B27 не определялись.

В 2020 г. пациент был консультирован ревматологом и инициирована терапия аксиального спондилита блокатором интерлейкина-17А (ИЛ-17А, секукинумаб) и метотрексатом, которые получал в течение 2 лет, однако в связи с частыми простудными заболеваниями метотрексат был отменен через полтора года применения. В марте 2023 г. пациент перенес COVID-19, после этого было зарегистрировано несколько эпизодов правостороннего отита. В сентябре 2023 г. после очередного эпизода острой респираторной вирусной инфекции пациент стал отмечать выраженную слабость, снижение толерантности к привычной нагрузке, эпизодически – появление кровавых корочек в носу. Резкое ухудшение отмечено 29.09.2023, когда появились кашель, одышка, в связи с чем пациент был госпитализирован в стационар, где были выявлены признаки почечной недостаточности: креатинин – 380–680 мкмоль/л, мочевина – 18,0–21,0 ммоль/л, анемия (Hb – 78 г/л), тенденция к тромбоцитозу (до 478×109/л) и лейкоцитоз с максимальным уровнем до 23×109/л, высокий уровень СРБ – до 15 норм.

38-1.jpg (45 KB)

По данным мультиспиральной компьютерной томографии (КТ) выявлена двусторонняя полисегментарная пневмония с преимущественным поражением левого легкого (рис. 1). При попытке проведения бронхоскопии в связи с нарастанием дыхательной недостаточности больной был переведен на искусственную вентиляцию легких (ИВЛ). Состояние было расценено как сепсис на фоне двусторонней полисегментарной пневмонии с развитием полиорганной недостаточности. Инициирована неадекватно массивная антимикробная терапия: азтреонам (Азнам), линезолид (Зивокс), цефтазидим (Завицефта), каспофунгин. Также была начата вено-венозная гемофильтрация с вазопрессорной поддержкой. С учетом тотального поражения легких и почек заподозрено системное заболевание, в частности системный васкулит, в связи с чем проведен сеанс плазмообмена с объемом замещения 6 л свежезамороженной плазмой. Несмотря на проводимое лечение, адекватный газообмен не был достигнут и в связи с сохраняющейся критической дыхательной недостаточностью была инициирована вено-венозная (ВВ) ЭКМО. Результатом консультации выездной бригады ревматолога и нефролога с учетом анамнеза стало предположение о наличии у больного системного АНЦА-ассоциированного васкулита с поражением почек, легких и ЛОР-органов. Для дальнейшей терапии пациент переведен в ОРИТ № 7 «ГКБ № 52».

При поступлении: состояние крайне тяжелое. Массивные отеки по типу анасарки, проводили ИВЛ, ВВ-ЭКМО. На этом фоне SpO2 составляла 89–90%. При санации трахеобронхиального дерева отмечено незначительное количество гнойно-геморрагической мокроты. В посеве бронхоальвеолярного лаважа был выявлен рост Pseudomonas aeruginosa. Несмотря на вено-венозную гемодиафильтрацию, сохранялась гиперазотемия с показателями креатинина до 460 мкмоль/л, мочевины до 15,9 ммоль/л, мочевой кислоты до 351 мкмоль/л; анемия (Hb – 76 г/л); уровень тромбоцитов снизился до 108×109/л после инициации ЭКМО, лейкоциты – до 8,2х109/л; сохранялся высокий уровень СРБ – до 187 мг/л. В каплях мочи лабораторно выявлен белок до 3,0 г/л, эритроциты до 500 кл/мкл. У пациента выявлено снижение показателей клеточного и гуморального иммунитета. Серологически выявлен повышенный уровень антител к ПР-3 – 77,6 МЕ/л.

Поставлен клинический диагноз «ANCA-ассоциированный васкулит, ГПА с гиперпродукцией антител к ПР3, генерализованная форма, высокой степени активности ВVAS 28, с поражением легких (геморрагический пневмонит), почек (быстропрогрессирующий гломерулонефрит, острая почечная недостаточность), ЛОР-органов».

С учетом состояния пациента продолжена постоянная вено-венозная гемодиафильтрация (CVVHDF) с массивной ультрафильтрацией до 6,0 л в сутки с максимальным достижением отрицательного гидробаланса с целью дегидратации легочной ткани. В ежедневном режиме проведено 7 сеансов терапевтического плазмообмена (ТПО) с объемом замещения до 3,8–4,0 л свежезамороженной плазмы. Первые 3 сеанса сочетались с внутривенным введением метилпреднизолона в дозах 125 мг до и 500 мг после сеанса ТПО. На 8-е сутки после прохождения стандартного протокола вининга пациент отлучен от ВВ-ЭКМО с последующей деканюляцией, однако сохранялась потребность в проведении ИВЛ. Дважды введен циклофосфамид в дозе 400 и 600 мг внутривенно с интервалом 2 недели в сочетании с внутривенным введением человеческого иммуноглобулина G в дозе 0,5 мг/кг с учетом высоких рисков инфекционных осложнений и уровня снижения скорости клубочковой фильтрации (СКФ). С учетом микробиологической картины посевов, а также невозможности исключить грибковое поражение головного мозга к массивной антибактерильной терапии был добавлен флюконазол внутривенно в дозе 800 мг/сут. в сочетании с липосомальным амфотерицином В в дозе 250 мг/сут. На фоне проводимого лечения на 15-е сутки пациента удалось отлучить от ИВЛ и деканюлировать трахею (рис. 2). На 24-е сутки постоянной вено-венозной гемодиафильтрации после очередного, третьего, введения циклофосфамида в дозе 400 мг отмечено появление нестимулированного диуреза, который в течение нескольких суток достиг 1,5 л, что позволило прекратить заместительную почечную терапию (ЗПТ).

39-1.jpg (89 KB)

В качестве патогенетической терапии ANCA-ассоциированного васкулита пациент получал преднизолон в дозе 40 мг/сут. перорально. Однако с учетом тяжести поражения почек, микробиологической картины и рисков грибковой инфекции было принято решение о необходимости усиления патогенетической терапии и добавления антагониста комплемента 5а – авакопана (Тавнеос) – в дозе 30 мг 2 раза в сутки. Решение о назначении незарегистрированного в РФ лекарственного средства для оказания медицинской помощи по жизненным показаниям было принято консилиумом врачей в соответствии с ФЗ № 61 «Об обращении лекарственных средств».

При выписке через месяц после поступления от пациента были получены следующие лабораторные показатели: СРБ – 5,88 мг/л; альбумин – 30,5 г/л, креатинин – 209,7 мкмоль/л, мочевина – 27,9 ммоль/л, лактатдегидрогеназа – 190 ЕД/л, гемоглобин – 72 г/л, эритроциты 2,38×1012/л, лейкоциты – 4,3×109/л, тромбоциты – 98×109/л, антитела к ПР-3 – норма (до 20).

В общем анализе мочи: белок – 0,53 г/л, эритроциты – 41 кл/мкл, лейкоциты – 22 кл/мкл.

Переносимость препарата авакопан была удовлетворительной, тошноты и рвоты не возникало. Некоторую сложность составляло сочетание с антимикотической терапией флюконазолом с учетом механизма ингибирования цитохрома Р4503А4 и межлекарственных взаимодействий, что заставило отказаться от применения азолов после получения отрицательных результатов исследования на глюкороноксиломаннан.

Через 2 месяца терапии преднизолоном, доза которого постепенно была снижена до 20 мг/сут., через 1,5 месяца после выписки из стационара пациент стал отмечать появление кровохарканья и, по данным КТ органов грудной клетки, отмечена отрицательная динамика в виде появления интерстициальных изменений (рис. 3).

Лабораторно: сохранялась анемия: уровень гемоглобина – 86 г/л, несмотря на включение в терапию эритропоэтина, нарастание уровня СРБ до 87 мг/л; при этом уровень креатинина после прекращения ЗПТ оставался на уровне 180 мкмоль/л при сохранении активности мочевого синдрома (белок – 0,8 г/л, эритроциты до 100 кл/мкл). Также была обнаружена реверсия титра антител к ПР-3 до 3 норм.

Пациент был повторно госпитализирован. При микробиологическом исследовании бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ) получены отрицательные результаты анализов на пневмоцистоз, цитомегаловирус (ЦМВ), COVID-19 и галактоманнан. Состояние расценено как рецидив основного заболевания, что потребовало повторного проведения 5 сеансов плазмообмена с введением человеческого иммуноглобулина не менее 60 г (0,8 г/кг) и введения ритуксимаба в дозе 1000 мг 2 раза с интервалом в 2 недели. При повторной полимеразной цепной реакции плазмы на ЦМВ получен положительный результат и в связи с реактивацией ЦМВ-инфекции назначен валганцикловир, с учетом СКФ (35 мл/мин) в дозе 450 мг/сут. продолжена терапия ко-тримоксазолом 480 мг 3 раза в неделю. От проведения пункционной биопсии почек больной отказался.

Пациент был выписан из стационара через 2 недели с выраженной положительной клинической и лабораторной динамикой. Достигнуты показатели гемоглобина 113 г/л, лейкоцитов 5,8×109/л. Уровень креатинина сохранялся на уровне 201 мкМоль/л, СРБ – 1,26 мг/л, антитела к ПР-3 – 1,2 (отрицательный). В общем анализе мочи: белок – 0,53, эритроциты – 12 кл/мкл. Достигнута полная деплеция В-клеток. (В-СD19 – 0%). У пациента повысилась толерантность к физической нагрузке, он вернулся к работе и в настоящее время находится под наблюдением нефролога амбулаторно.

Через 6 месяцев после рецидива заболевания (8 месяцев от начала патогенетической терапии) пациент постоянно принимал терапию преднизолоном в дозе 7,5 мг ежедневно и авакопан 30 мг 2 раза в сутки. У пациента полностью регрессировала гематурия, суточная протеинурия составляла 0,72 г/сут., креатинин – 202 мкмоль/л, мочевина – 12 ммоль/л, гемоглобин – 123 г/л, антитела к ПР-3 не определялись.

С целью предотвращения риска развития рецидива пациенту через полгода в качестве поддерживающей терапии введен ритуксимаб в дозе 1000 мг. Клинически у пациента можно констатировать ремиссию ГПА в отношении экстраренальных проявлений и частичную ремиссию гломерулонефрита (рис. 4).

40-1.jpg (43 KB)

Обсуждение

Больной ГПА, диагностированным в далеко зашедшей стадии заболевания, с поражением жизненно важных органов, с высокой степенью активности по BVAS имел чрезвычайно высокие риски летального исхода. Это было обусловлено, с одной стороны, тяжестью легочного поражения с критической дыхательной недостаточностью, требовавшей проведения ИВЛ, с непротективными параметрами, с дальнейшей инициацией ВВ-ЭКМО, прогрессирующим гломерулонефритом с острым поражением почек в олигурической стадии, требующим ЗПТ, и, с другой стороны, активным инфекционным процессом с ростом грамотрицательной флоры в БАЛ и наличием антигенов к криптококкозу (глюкороноксиломаннан), который не стоило сбрасывать со счетов, учитывая чувствительность методики и наличие мозговой симптоматики. Выбор патогенетической терапии был сложным, т.к. она должна была быть достаточной для подавления активности заболевания, но адекватной в условиях сопутствовавшей инфекции. Терапия была инициирована серией сеансов плазмообмена и пульсового введения ГКС. Дозы циклофосфамида были в значительной степени снижены из-за крайне высокого риска инфекционных осложнений, однако пациент получал человеческий иммуноглобулин в высоких дозах – до 0,8 мг/кг, который при вторичных иммунодефицитах представляет собой и иммуномодулирующую, и ЗПТ. Принимая во внимание тяжесть гломерулонефрита и инфекционные осложнения, решением консилиума была инициирована терапия препаратом авакопан в стандартно рекомендуемой дозе 30 мг 2 раза в сутки. Следует отметить, что в описанной клинической ситуации критически необходимо было конт-ролировать дозу принимаемых ГКС, стремясь к минимальному терапевтическому уровню. Терапия же препаратом авакопан в условиях клин­ического исследования ADVOCAT и в реальной клинической практике показала возможности для снижения поддерживающих доз ГКС [34]. Важно было также начать терапию как можно скорее. В исследовании эффективности и безопасности авакопана в реальной клинической практике медиана времени до начала приема авакопана после начала индукционной терапии составила 3 недели и было показано, что у пациентов, начавших прием авакопана в течение <30 дней после индукционной терапии наблюдались более значимое повышение показателя рСКФ, укорочение времени достижения минимальной протеинурии, а также снижение объема потребления ГКС по сравнению с группой пациентов, начавших прием авакопана спустя ≥30 дней после индукционной терапии. В группе более «позднего начала терапии» была существенно ниже вероятность прекращения терапии ГКС, чем у пациентов, начавших прием авакопана в течение <30 дней после индукционной терапии. В этой группе также отмечено больше инфекций, потребовавших госпитализаций, что, вероятно, связано с более интенсивным применением ГКС [34].

На фоне терапии авакопаном у пациента нормализовался уровень антител к ПР-3, был прекращен гемодиализ с частичным восстановлением почечной функции. Однако через 2 месяца развился рецидив заболевания в виде легочного процесса, при этом почечная функция оставалась стабильной, что в свою очередь говорит о позитивном эффекте применения авакопана в отношении гломерулонефрита. Рецидив заболевания был успешно купирован коротким курсом плазмообменов и двукратным введением ритуксимаба. Через 6 месяцев приема авакопана в сочетании с невысокими дозами ГКС была достигнута ремиссия гломерулонефрита (исчезновение гематурии, суточная протеинурия не превышала 0,7 г/сут., почечная функция стабилизировалась на уровне СКФ 39 мл/мин). Суточная доза преднизолона была снижена до 5 мг.

Переносимость препарата авакопан пациентом была удовлетворительной, не наблюдалось желудочно-кишечных или иных побочных эффектов. С учетом фармакокинетики препарата необходимо было учитывать все возможные межлекарственные взаимодействия, в связи с чем в терапии не применялись противогрибковые препараты азоловой группы. В исследованиях авакопана (как в рандомизированных, так и в реальной клинической практике) авторы наблюдали приемлемый профиль безопасности авакопана. Наиболее частой причиной отмены препарата было повышение активности аминотрансфераз в сыворотке крови [34].

Заключение

Таким образом, комплексная терапия, включившая терапевтический плазмообмен, пульсовое введение ГКС (не более 2500 мг), прием преднизолона не более 40 мг на старте с последующим снижением, циклофосфан, ритуксимаб и авакопан, позволила достичь пациентом клинической ремиссии ГПА в отношении экстраренальных проявлений и частичную ремиссию гломерулонефрита, а к 9-му месяцу довести дозу преднизолона до минимальной поддерживающей, что соответствует общим целям лечения ANCA-васкулита.

Список литературы

  1. Hutton H.L., Holdsworth S.R., Kitching A.R. ANCA-Associated Vasculitis: Pathogenesis, Models, and Preclinical Testing. Semin. Nephrol. 2017;37(5):418–35. Doi: 10.1016/j.semnephrol.2017.05.016. 
  2. Al-Hussain T., Hussein M.H., Conca W., et al. Pathophysiology of ANCA-associated Vasculitis. Adv. Anat. Pathol. 2017;24(4):226–34. Doi: 10.1097/PAP.0000000000000154. 
  3. Watts R.A., Lane S.E., Bentham G., Scott D.G. Epidemiology of systemic vasculitis: a ten-year study in the United Kingdom. Arthrit. Rheum. 2000;43(2):414–9. Doi: 10.1002/1529-0131(200002)43:2<414:AID-ANR23>3.0.CO;2-0. 
  4. Watts R.A., Mahr A., Mohammad A.J., et al. Classification, epidemiology and clinical subgrouping of antineutrophil cytoplasmic antibody (ANCA)-associated vasculitis. Nephrol. Dial. Transplant. 2015;30(Suppl. 1):i14–22. Doi: 10.1093/ndt/gfv022. 
  5. Jennette J.C., Falk R.J., Bacon P.A., et al. 2012 revised International Chapel Hill Consensus Conference Nomenclature of Vasculitides. Arthrit. Rheum. 2013;65(1):1–11. Doi: 10.1002/art.37715. 
  6. Gapud E.J., Seo P., Antiochos B. ANCA-Associated Vasculitis Pathogenesis: A Commentary. Curr. Rheum. Rep. 2017;19(4):15. Doi: 10.1007/s11926-017-0641-0. 
  7. Jennette J.C., Nachman P.H. ANCA Glomerulonephritis and Vasculitis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2017;12(10):1680–91. Doi: 10.2215/CJN.02500317. 
  8. Jennette J.Ch., Nachman P.H. ANCA Glomerulonephritis and Vasculitis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2017;12(10):1680–91.
  9. Бекетова Т.В., Фролова Н.Ф., Столяревич Е.С. и др. Проблемы диагностики и лечения АНЦА-ассоциированных системных васкулитов: в фокусе АНЦА-негативный pauci-иммунный гломерулонефрит. Научно-практическая ревматология. 2016;54(5):543–52. 
  10. Wallace Z.S., Miloslavsky E.M. Management of ANCA associated vasculitis. BMJ. 2020;368:m421. Doi: 10.1136/bmj.m421. 
  11. Hellmich B., Flossmann O., Gross W.L., et al. EULAR recommendations for conducting clinical studies and/or clinical trials in systemic vasculitis: focus on anti-neutrophil cytoplasm antibody-associated vasculitis. Ann. Rheum. Dis. 2007;66(5):605–17. Doi: 10.1136/ard.2006.062711. 
  12. Yates M., Watts R.A., Bajema I.M., et al. EULAR/ERA-EDTA recommendations for the management of ANCA-associated vasculitis. Ann. Rheum. Dis. 2016;75(9):1583–94. Doi: 10.1136/annrheumdis-2016-209133. 
  13. Jennette J.Ch., Nachman P.H. ANCA Glomerulonephritis and Vasculitis. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2017;12(10):1680–91. Doi: 10.2215/CJN.02500317.
  14. Лысенко М.А., Фролова Н.Ф., Кецкало М.В. и др. Экстракорпоральная мембранная оксигенация при жизнеугрожающем ANCA-позитивном диффузном некротизирующем геморрагическом альвеолите. Клин. Нефрология. 2018;3. Doi: https://dx.doi.org/10.18565/nephrology.2018.3.57-62. 
  15. Kronbichler A., Lee K.H., Denicolò S., et al. Immunopathogenesis of ANCA-Associated Vasculitis. Int. J. Mol. Sci. 2020;21(19):7319. Doi: 10.3390/ijms21197319. 
  16. Xiao H., Schreiber A., Heeringa P., et al. Alternative complement pathway in the pathogenesis of disease mediated by anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies. Am. J. Pathol. 2007;170:52–64.
  17. Hutton H.L., Holdsworth S.R., Kitching A.R. ANCA-Associated Vasculitis: Pathogenesis, Models, and Preclinical Testing. Semin. Nephrol. 2017;37(5):418–35. Doi: 10.1016/j.semnephrol.2017.05.016. 
  18. Jennette J.Ch., Nachman P.H. ANCA Glomerulonephritis and Vasculitis. Clin J. Am. Soc. Nephrol. 2017;12(10):1680–91. Doi: 10.2215/CJN.02500317.
  19. 19. Huugen D., van Esch A., Xiao H., еt al. Inhibition of complement factor C5 protects against anti-myeloperoxidase antibody-mediated glomerulonephritis in mice. Kidney Int. 2007;71:646–54.
  20. Chen M., Jayne D.R., Zhao M.H. Complement in ANCA-associated vasculitis: mechanisms and implications for management. Nat. Rev. Nephrol. 2017;13:359–67.
  21. Quintana L.F., Kronbichler A., Blasco M., et al. ANCA associated vasculitis: The journey to complement-targeting therapies. Mol. Immunol. 2019;112:394–8. https://doi. org/10.1016/j.molimm.2019.06.018.
  22. Xiao H, Dairaghi D.J., Powers J.P., et al. C5a receptor (CD88) blockade protects against MPO-ANCA GN. J. Am. Soc. Nephrol. 2014;25(2):225–31. Doi: 10.1681/ASN.2013020143. 
  23. Bekker P., Dairaghi D., Seitz L., et al. Characterization of Pharmacologic and Pharmacokinetic Properties of CCX168, a Potent and Selective Orally Administered Complement 5a Receptor Inhibitor, Based on Preclinical Evaluation and Randomized Phase 1 Clinical Study. PLoS One. 2016;11(10):e0164646. Doi: 10.1371/journal.pone.0164646. Erratum in: PLoS One. 2019;14(1):e0210593. 
  24. Alihosseini C., Kopelman H., Zaino M., Feldman S.R. Avacopan for the Treatment of Anti-Neutrophil Cytoplasmic Antibody (ANCA)-Associated Vasculitis. Ann. Pharmacother. 2023;57(12):1449–54. Doi: 10.1177/10600280231161592. 
  25. Brilland B., Garnier A.S., Chevailler A., et al. Complement alternative pathway in ANCA-associated vasculitis: Two decades from bench to bedside. Autoimmun. Rev. 2020;19(1):102424. Doi: 10.1016/j.autrev.2019.102424. 
  26. Vifor. Tavneos 10 mg hard capsules (Avacopan). Summary of product characteristics. 2022. https://www.ema.europa.eu/en/documents/product-information/tavneos-epar-product-information_en.pdf.
  27. Jayne D.R.W., Bruchfeld A.N., Harper L., et al. CLEAR Study Group. Randomized Trial of C5a Receptor Inhibitor Avacopan in ANCA-Associated Vasculitis. J. Am. Soc. Nephrol. 2017;28(9):2756–67. Doi: 10.1681/ASN.2016111179. 
  28. Merkel P.A., Niles J., Jimenez R., et al. CLASSIC Investigators. Adjunctive Treatment With Avacopan, an Oral C5a Receptor Inhibitor, in Patients With Antineutrophil Cytoplasmic Antibody-Associated Vasculitis. ACR. Open Rheumatol. 2020;2(11):662–71. Doi: 10.1002/acr2.11185. 
  29. Jayne D.R.W., Merkel P.A., Schall T.J., Bekker P. ADVOCATE Study Group. Avacopan for the Treatment of ANCA-Associated Vasculitis. N. Engl. J. Med. 2021;384(7):599–609. Doi: 10.1056/NEJMoa2023386. Erratum in: N. Engl. J. Med. 2024;390(4):388. 
  30. Geetha D., Dua A., Yue H., et al. ADVOCATE Study Group. Efficacy and safety of avacopan in patients with ANCA-associated vasculitis receiving rituximab in a randomised trial. Ann. Rheum. Dis. 2024;83(2):223–32. Doi: 10.1136/ard-2023-224816. 
  31. https://www.fda.gov/drugs/news-events-human-drugs/fda-approves-add-drug-adults-rare-form-blood-vessel-inflammation.
  32. https://www.ema.europa.eu/en/medicines/human/orphan-designations/eu-3-14-1372.
  33. KDIGO ANCA Vasculitis Work Group. KDIGO 2024 Clinical Practice Guideline for the Management of Antineutrophil Cytoplasmic Antibody (ANCA)-Associated Vasculitis. Kidney Int. 2024;105(3S):S71–116. Доступно по ссылке: https://kdigo.org/wp-content/uploads/2024/02/KDIGO-2024-ANCA-Vasculitis-Guideline.pdf. Accessed February 2024.
  34. Zonozi R., Aqeel F., Le D., et al. Real-World Experience With Avacopanin Antineutrophil Cytoplasmic Autoantibody-Associated Vasculitis. Kidney Int. Rep. 2024;9(6):1783–91. Doi: 10.1016/j.ekir.2024.03.022.

Об авторах / Для корреспонденции

Фролова Надия Фяатовна – к.м.н., заместитель главного врача по нефрологии, заведующая межокружного нефрологического центра ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3, доцент кафедры нефрологии ФДПО Российского университета медицины (РосУниМед);
e-mail: nadiya.frolova@yandex.ru. ORCID: 0000-0002-6086-5220
Кобзарь Маргарита Васильевна – аналитик проектного офиса ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3; e-mail: m.v.kobzar@yandex.ru.
ORCID: 0009-0004-0236-653X.
Мутовина Зинаида Юрьевна – к.м.н., заведующая ревматологическим отделением №1 ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3, доцент кафедры терапии, кардиологии и функциональной диагностики ФГБУ ЦГМА УДП РФ с курсом нефрологии; e-mail: zmutovina@mail.ru.
ORCID: 0000-0001-5809-601510:07.
Арболишвили Георгий Нодаревич – заместитель главного врача по анестезиологии и реаниматологи ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3, доцент кафедры анестезиологии и реаниматологии факультета фундаментальной медицины Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова; e-mail: geodoc@yandex.ru. ORCID: 0000-0002-2252-3975.
Павлов Денис Петрович – заведующий отделением ОРИТ №7 ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3; e-mail: dr.pavlov@mail.ru.
ORCID: 0009-0000-0572-8031.
Шмелева Дарья Юрьевна – врач-невролог ревматологического отделения ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3; e-mail: dasha068@icloud.com. ORCID: 0009-0001-8310-2795.
Манеров Фарид Фарокович – врач-реаниматолог ОРИТ №2 ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3; e-mail: faridmanerov036@gmail.com. ORCID: 0009-0004-6478-6652.
Лысенко Марьяна Анатольевна – д.м.н., профессор, главный врач ГБУЗ «ГКБ №52 ДЗМ». Адрес: 123182 Москва, ул. Пехотная, 3, профессор кафедры общей терапии Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова; e-mail: gkb52@zdrav.mos.ru.
ORCID: 0000-0001-6010-7975.

Также по теме